МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

 

ВЛАДИВОСТОКСКИЙ БАЗОВЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ КОЛЛЕДЖ

 

 

С.Е. Хвощёва

 

 

 

 

СТАНДАРТ

 ПРОФЕССИОНАЛЬНОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ

МЕДИЦИНСКОЙ СЕСТРЫ

ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО ОТДЕЛЕНИЯ

СТАЦИОНАРА

 

ЧАСТЬ IІ

(медсестра терапевтическая процедурного кабинета)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Владивосток

2002 год

 

ВВЕДЕНИЕ

 

В сборнике представлены основные стандарты профессиональной деятельности медицинской сестры процедурного кабинета терапевтического отделения стационара. Пособие имеет практическую направленность и охватывает сферы деятельности медсестры в терапии.

Основная задача данной работы – дать стандарт (норму) правильного, четкого и последовательного выполнения основных сестринских вмешательств. Методика выполнения  представлена в виде алгоритмов.

 

 

СОДЕРЖАНИЕ

1.                       Должностная инструкция  медсестры процедурного кабинета.

2.                       Перечень инструктивных материалов для процедурного кабинета.

3.                       Стандарт оснащения процедурного кабинета.

4.                       Стандарты манипуляций.

5.                       Документация процедурного кабинета.

6.                       Охрана труда процедурных медсестер.

7.                       Сроки годности лекарственных средств, изготовленных в аптеке.

8.                       Лекарственные средства, не совместимые в одном шприце.

9.                       Постинъекционные осложнения.

10.                   Технология переливания крови.

11.                   Экспертная карта наблюдения и оценки санитарно - противоэпидемиологического режима.

12.                   Использование  медицинских перчаток.

13.                   Накрывание стерильного столика.

14.                   Стерилизация изделий медицинского назначения.

15.                   Санитарно – противоэпидемиологический режим в процедурном кабинете.

16.                   Доврачебная помощь при неотложных состояниях в практике процедурной медсестры.

17.                   Перечень инструктивно – методических документов их вопросам стерилизации и дезинфекции.

18.                   Меры предосторожности при работе с дезинфицирующими и моющими средствами.

19.                   Основные санитарно – противоэпидемиологические требования к работе процедурной медицинской сестры при выполнении манипуляций.

20.                   Стандартизированные планы сестринского ухода.

 ДОЛЖНОСТНАЯ ИНСТРУКЦИЯ МЕДСЕСТРЫ ПРОЦЕДУРНОГО КАБИНЕТА.

I.  ОБЩИЕ ПОЛОЖЕНИЯ

На должность медсестры процедурного кабинета принимаются лица, имеющие законченное среднее медицинское образование, а также стаж работы в данном отделении не менее 3-х лет.   Принимаются и увольняются главным врачом больницы по представлению зав. отделением главной медицинской сестры больницы. Перед поступлением на работу проходит обязательное медицинское обследование в цеховой службе больницы.

Процедурная  медсестра находится в непосредственном подчинении у зав. отделением и старшей медсестры отделения. Внепосредственном подчинении у процедурной медсестры находятся санитарка кабинета.

Процедурная  медсестра отделения работает по графику, составленному старшей медсестрой, утвержденному зав. отделением, зам. главного врача соответствующего профиля, согласованным с профсоюзным комитетом.

В своей работе руководствуется должностной  инструкцией, приказами и инструкциями по организации работы кабинета, указаниями зав. отделением, главного врача больницы.

Замена процедурной медсестры в период ее отсутствия проводится зав. отделением и старшей медсестрой путем перевода на эту должность одной из медсестер отделения, хорошо освоивших данную работу.

 

I.                    ОБЯЗАННОСТИ

Основными обязанностями процедурной медсестры является правильная организация работы кабинета и выполнение назначенных процедур.

1)      Выполнять манипуляции только по назначению врача.

2)      Начинать работу только после подготовки кабинета к выполнению процедур, тщательной подготовки инструментария.

3)      Соблюдать последовательность выполнения процедур в соответствии с почасовым графиком работы.

4)      Строго соблюдать требования асептики и антисептики при выполнении процедур.

5)       В течение работы поддерживать необходимый порядок, соответствующую культуру работы и санитарное состояние.

6)      Строго соблюдать технологию проведения процедур и манипуляций:

-         внутривенных, внутримышечных, подкожных инъекций

-         внутрикожных проб

-         взятие крови из вены для диагностических исследований

-         проведение (под контролем врача) определения группы крови и резус-фактора, переливание крови и кровезаменителей, постановка систем и введение лекарств капельным методом

-         подготовка инструментария к сдаче в центральную стерилизационную

-         подготовка материала к проведению процедур

7)      Немедленно ставить в известность врача об осложнениях, связанных с производством манипуляций и проведением процедур в кабинете, владеть методами оказания доврачебной помощи. Готовит необходимый набор инструментов и материала и ассистирует врачу при проведении других манипуляций в данном кабинете.

8)      Качественно вести документацию процедурного кабинета.

9)      Ежедневно делать отметки в листах врачебных назначений о выполненных процедурах.

10)  Строго соблюдать санитарно-эпидемиологический режим кабинета, носить спецодежду, соответствующую  требованиям процедурного кабинета.

11)  Своевременно пополнять кабинет  необходимым количеством инструментария, медикаментов, сывороток для определения группы крови, другого необходимого для работы в течение суток набора растворов, препаратов, инвентаря, антисептиков.

12)  Владеть технологией постановки проб на скрытую кровь, отмывание от дезинфицирующих и моющих средств.

13)  Осуществлять ежедневный контроль за наличием необходимого количества лекарственных препаратов в аптеке для оказания экстренной помощи.

14)  Своевременно вносить изменения в инструкции по санитарно-эпидемиологическому режиму, способам подготовки рук к работе и т.д.

15)  Осуществлять контроль за работой санитарки кабинета.

16)  Соблюдать требования по проведению стерилизации в сухожаровом шкафу и ведение соответствующей документации.

17)  Обеспечить контроль за рациональным использованием инструментария, правильный учет. Своевременно проводить замену пришедшего в негодность медоборудования, инструментария.  

18)  Обеспечить правильные условия хранения лекарственных препаратов, растворов и сывороток в кабинете.

19)  Соблюдать правила внутреннего распорядка, техники безопасности, не отлучаться с отделения  без ведома старшей медсестры, не оставлять процедурный кабинет, уходя домой, незапертым на ключ. Сдавать ключи палатной медсестре поста.

20)  Постоянно совершенствовать свои медицинские знания путем чтения специальной литературы, участие в производственной учебе, сестринских конференциях, не реже чем через 5 лет проходить циклы специализации и усовершенствования на курсах повышения квалификации, принимать участие в подготовке медсестер отделения для работы в процедурном кабинете.

 

II.                 ПРАВА

 

1.      Вносить предложения зав. отделением, старшей медсестре по совершенствованию работы кабинета.

2.      Получать необходимую для четкого выполнения своих обязанностей информацию.

3.      Знакомиться с актами проверки работы кабинета и в случае несогласия вносить в них свои замечания и предложения.

4.      Вносить предложения о поощрении и наложении взысканий на санитарку кабинета.

5.      Принимать участие в производственных совещаниях процедурных медсестер

6.      Проходить аттестацию (переаттестацию) для получения квалификационной категории.

                                              

III.               ОТВЕТСТВЕННОСТЬ

1.      За правильную организацию работы процедурного кабинета в течении круглых суток

2.      За своевременное выполнение назначений врача по проведению процедур

3.      За выполнение санитарно-эпидемиологического режима на своем рабочем месте, правил асептики и антисептики

4.      За обеспечение кабинета в течении суток необходимым количеством инструментов, лекарственных препаратов, растворов, стерильного материала для выполнения процедур

5.      За соблюдение условий и правил хранения лекарственных препаратов, инвентаря, инструментов, оборудования кабинета

6.      За качественное ведение документации кабинета и проведение отметок о выполненных процедурах

7.      За правильную организацию работы санитарки кабинета.

 

ЗНАНИЯ И УМЕНИЯ

1. ОБЩИЕ ЗНАНИЯ.

·                  Основы законодательства и права в здравоохранении;

·                  Основы медицинского страхования;

·                  Организацию работы мед. учреждения в новых экономических условиях;

·                  Статистические показатели;

·                  Теоретические основы сестринского дела;

·                  Философию и этику сестринского дела;

·                  Психологию профессионального общения;

·                  Основные причины, клинические проявления, методы диагностики, осложнения, принципы лечения и профилактики заболеваний;

·                  Основы геронтологии и гериатрии;

·                  Организацию сестринского ухода за больными на основе этапов сестринского процесса;

·                  Основы паллиативной сестринской помощи, основы танатологии;

·                  Виды, формы и методы реабилитации, организацию и проведение мероприятий по реабилитации пациентов;

·                  Основные лекарственные группы, показания и противопоказания к применению, характер взаимодействия, осложнения, нормативные документы;

·                  Основы валеологии и санологии, методы и средства санитарного просвещения;

·                  Основы диетологии;

·                  Основы диспансеризации;

·                  Систему инфекционного контроля, инфекционной безопасности пациентов и персонала мед. учреждения;

·                  Учетно-отчетную деятельность; основные виды мед. документации;

·                  Охрану труда и технику безопасности в мед. учреждении;

·                  Функциональные обязанности, права и ответственность младшего мед. персонала;

·                  Основы медицины катастроф.

2. ОБЩИЕ УМЕНИЯ.

·        Анализировать ситуацию и принимать решения в пределах своей компетенции;

·        Владеть навыками общения;

·        Выполнять диагностические, лечебные, реанимационные, реабилитационные, профилактические, лечебно-оздоровительные, санитарно-гигиенические, санитарно-просветительные мероприятия в соответствии со своей профессиональной компетенцией;

·        Осуществлять и документировать основные этапы сестринского процесса при уходе за пациентом;

·        Оценивать состояние и выделять ведущие синдромы и симптомы у больных, оказывать экстренную доврачебную помощь при неотложных состояниях;

·        Осуществлять и документировать основные этапы сестринского процесса при паллиативной сестринской помощи инкурабельным больным;

·        Оценивать действие лекарственных средств;

·        Подготовить пациента к лабораторным, функциональным, инструментальным исследованиям;

·        Выполнять основные виды физиотерапевтических процедур, проводить занятия по лечебной гимнастике, владеть приемами массажа, контролировать выполнение рекомендаций по трудотерапии, использовать элементы психотерапии, контролировать соблюдение назначенной врачом диеты, оценивать эффективность проводимых мероприятий;

·        Владеть методами и средствами санитарного просвещения, планировать и оценивать комплексные программы профилактики, направленные на воспитание и обучение отдельных лиц, семей, групп населения сохранению и укреплению здоровья;

·        Соблюдать фармацевтический порядок получения, хранения и использования лекарственных средств;

·        Соблюдать правила техники безопасности и охраны труда;

·        Вести медицинскую документацию;

·        Выполнять требования инфекционного контроля;

·        Оказывать доврачебную помощь в чрезвычайных ситуациях;

·        Повышать профессиональный уровень знаний, умений и навыков;

3. СПЕЦИАЛЬНЫЕ ЗНАЧЕНИЯ

·      Систему организации больничной помощи населению;

·      Нормативные документы, определяющие основные задачи, функции, условия и порядок  деятельности больничного учреждения;

·      Оснащение, организацию, режим работы структурных подразделений больничного учреждения;

·      Организацию сестринского дела;

·      Лечебно-охранительный режим;

·      Систему больничного инфекционного контроля и инфекционной безопасности;

·      Охрану труда и технику безопасности;

·      Организацию сестринского ухода;

·      Основные синдромы острых нарушений функций систем и органов;

·      Современные методы интенсивной терапии и реанимации;

·      Организацию восстановительного лечения и реабилитации;

·      Основы рационального и сбалансированного питания;

·      Основные учетные формы медицинской документации;

4. СПЕЦИАЛЬНЫЕ УМЕНИЯ

·        Осуществлять и документировать основные этапы сестринского процесса;

·        Выполнять требования больничного инфекционного контроля и инфекционной безопасности;

·        Выполнять профилактические, лечебные, диагностические мероприятия, назначаемые врачом, готовить инструменты и ассистировать врачу при проведении сложных манипуляций;

·        Владеть техникой подготовки больных к диагностическим исследованиям;

·        Проводить санитарно-просветительную работу среди пациентов и их родственников, обучение методом ухода и первой медицинской помощи, обучение здоровому образу жизни;

5. МАНИПУЛЯЦИИ

·      Санитарная обработка больного;

·      Приготовление дезинфицирующих растворов;

·      Дезинфекция предметов ухода за больным;

·      Предстерилизационная очистка шприцев, игл, инструментов;

·      Пользование стерильным биксом;

·      Обеззараживание рук;

·      Накрытие стерильного стола;

·      Транспортировка  и перекладывание больного;

·      Пользование функциональной кроватью;

·      Приготовление постели;

·      Смена нательного и постельного белья;

·      Гигиенические мероприятия в постели;

·      Подмывание;

·      Профилактика пролежней;

·      Кормление больного в постели;

·      Введение питательной смеси через зонд;

·      Измерение температуры тела;

·      Измерение пульса;

·      Определение числа дыхательных движений;

·      Измерение АД;

·      Определение суточного диуреза;

·      Постановка банок;

·      Постановка горчичников;

·      Постановка согревающего компресса;

·      Применение грелки и пузыря со льдом;

·      Приготовление лечебной ванны;

·      Подача кислорода;

·      Подача судна и мочеприемника;

·      Постановка газоотводной трубки;

·      Постановка всех видов клизм;

·      Катетеризация мочевого пузыря;

·      Видение документации по учету лекарственных средств;

·      Применение мази, пластыря, присыпки;

·      Закапывание капель в нос, уши и глаза, закладывание мази за веко;

·      Пользование ингалятором;

·      Набор дозы инсулина;

·      Все виды инъекций;

·      Сбор системы для капельного введения;

·      Венепункция;

·      Снятие ЭКГ;

·      Взятие мазка из зева;

·      Сбор мокроты;

·      Анализ крови на гемоглобин, СОЭ, лейкоциты;

·      Анализ смочи по Зимницкому;

·      Фракционное зондирование желудка;

·      Зондирование желчного пузыря;

·      Сбор кала на исследование;

·      Подготовка больного к эндоскопии;

·      Подготовка больного и участие в проведении всех видов пункций;

·      Проведение искусственного дыхания;

·      Наложение всех видов повязок;

·      Определение группы крови, проба на индивидуальную совместимость;

·      Остановка кровотечений из поверхностно расположенных сосудов.

 

 

ПЕРЕЧЕНЬ ИНСТРУКТИВНЫХ МАТЕРИАЛОВ ДЛЯ ПРОЦЕДУРНОГО КАБИНЕТА

1.      Профессионально-должностная инструкция.

2.      Приказы, инструктивные письма МЗ  РФ, учреждений Госсанэпиднадзора, местной администрации, регламентирующих деятельность медсестры процедурного кабинета.

3.      Перечень документации процедурного кабинета.

4.      Перечень оборудования, оснащения процедурного кабинета.

5.      Перечень последовательности рабочего процесса.

6.      Перечень медикаментов, необходимых для оказания экстренной помощи.

7.      Перечень медикаментов, перечень мероприятий, проводимых при анафилактическом шоке.

8.      Памятка медсестры об осторожном и внимательном обращении с лекарственными средствами.

9.      Перечень лекарственных средств, сроки годности.

10.  Инструкция по хранению препаратов.

11.  Высшие разовые дозы наркотических средств.

12.  Таблица противоядий при отравлении наркотическими средствами.

13.  Высшие разовые  и суточные дозы сильнодействующих и ядовитых лекарственных средств.

14.  Несовместимость лекарственных средств.

15.  Перечень лекарственных средств, хранимых в холодильнике, последовательность их размещения.

16.  Инструкция по подготовке рук к накрытию стерильного стола.

17.  Техника выполнения инъекций.

18.  Инструкция по уходу за подключичным катетером.

19.  Схема расположения медикаментов в шкафах.

20.  Последовательность расположения инструментов и оборудования на манипуляционных столах в дневное и ночное время.

21.  Образцы требований для выписки кровезаменителей, крови и инфузионных растворов.

22.  Техника взятия крови для лабораторных исследований.

23.  Методика постановки проб на скрытую кровь.

24.  Порядок работы с кровью.

25.  Техника переливания крови.

26.  Порядок обработки инструментов после использования.

27.  Комплекс противоэпидемических мероприятий по профилактике ВИЧ//СПИД, гепатитов в процедурном кабинете.

28.  Меры предосторожности при работе с дезинфицирующими и моющими средствами.

29.  Первая медицинская помощь при отравлении дезинфицирующими средствами.

30.  Приготовление 1 л моющего раствора.

31.  Методы стерилизации.

32.  Уборка процедурного кабинета.

 

СТАНДАРТ ОСНАЩЕНИЯ ПРОЦЕДУРНОГО КАБИНЕТА.

1.      Облучатель бактерицидный стационарный (потолочный или настенный)                          -1

2.      Облучатель бактерицидный передвижной                                                                               -1

3.      Сухожаровой шкаф                                                                                                                       -1

4.      Комплект для переливания крови                                                                                              -2

5.      Инструментарий:

-         зажимы кровоостанавливающие                                                                                         -4

-         корнцанг                                                                                                                                 -2

-         пинцет анатомический                                                                                                          -2

-         пинцет анатомический малый                                                                                            -2

-         ножницы                                                                                                                                 -2

-         роторасширитель                                                                                                                   -1

-         языкодержатель                                                                                                                     -1

-         мешок Амбу                                                                                                                            -1

-         коробки стерилизационные                                                                                                 -8

6.      Резиновый  жгут для остановки кровотечения                                                                         -2

7.      Резиновый жгут для внутривенных вливаний                                                                         -2

8.      Штатив для сывороток                                                                                                                -1

9.      Штативы для пробирок                                                                                                               -2

10.  Укладка на форму 50                                                                                                                   -1

11.  Контейнеры для отправки пробирок в лабораторию                                                             -2

12.  Лотки почкообразные                                                                                                                 -4

13.  Кюветы малые или средние                                                                                                       -4

14.  Штативы для в/в капельных вливаний                                                                               - 6-12           

15.  Термометр для холодильника                                                                                                     -1

16.  Термометр для сухожарового шкафа                                                                                          -1

17.  Термометр водяной                                                                                                                     -1

18.  Емкости для дезинфекции                                                                                                          -2

19.  Емкости для предстерилизационной очистки                                                                          -2

20.  Емкость с дезинфицирующим средством для пинцета                                                           -1

21.  Мерные емкости для дезинфицирующих средств и моющего средства

22.  Перчатки                                                                                                                                 -5-10

23.  Химический контроль (мочевина, бензойная кислота, тиомочевина)

24.  Системы одноразовые                                                                                                               -10

25.  Шприцы одноразовые                                                                                                     -100-200

26.  Емкость для дезинфекции кровяных шариков                                                                           -1

27.  Подставка для биксов                                                                                                                  -1

28.  Подставка для таза                                                                                                                       -1

Стандарт оснащения процедурного кабинета твердым инвентарем           

1.      Рабочий стол                                                                                                                                            -1

2.      Стул для медсестры                                                                                                                     -1

3.      Винтовой стул                                                                                                                              -1

4.      Медицинский шкаф для стерильных растворов и медикаментов                                           -1

5.      Инструментальный столик                                                                                                         -2

6.      Тумбочка                                                                                                                                   -1-2

7.      Холодильник                                                                                                                                -1

8.      Кушетка медицинская                                                                                                      -1

9.      Стол процедурный                                                                                                                      -1

10.  Шкаф навесной для медикаментов экстренной и посиндромной помощи                            -1

11.  Мусоросборник (ведро эмалированное с крышкой)                                                                 -1

12.  Уборочный инвентарь:

-         ведро оцинкованное для мытья полов                                                                                -1

-         ведро для мытья стен                                                                                                             -1

-         швабра для мытья полов                                                                                                       -1

-         швабра для мытья стен                                                                                                          -1

-         емкость для ветоши (обработка предметов обстановки, поверхностей)                          -1

13.  Дезинфицирующие средства

14.  Моющие средства

 

Весь уборочный инвентарь должен иметь четкую маркировку с указанием помещения и видов работ.

 

СТАНДАРТЫ МАНИПУЛЯЦИЙ

ПРИГОТОВЛЕНИЕ 10% ИСХОДНОГО ОСВЕТЛЁННОГО РАСТВОРА ХЛОРНОЙ ИЗВЕСТИ.

ПРИГОТОВИТЬ: ведро с крышкой емкостью 10 л, сухую хлорную известь 1 кг, деревянную лопатку, 10 л воды, резиновый фартук, стеклянную бутыль, воронку, перчатки, влажную  марлевую повязку.

1.      Надеть фартук, маску, перчатки.

2.      Поместить в ведро сухую хлорную известь.

3.      Измельчить известь деревянной  лопаткой и добавить 1-2 л воды.

4.      Размешать до получения однородной массы.

5.      Добавить при постоянном помешивании воду до 10 л.

6.      Закрыть ведро крышкой и поставить в недоступное место на 2 часа.

7.      Снять фартук, перчатки, маску, прополоскать в проточной воде и просушить.

8.      Через  сутки слить отстоявшийся р-р с помощью воронки в бутыль  из темного стекла с притертой пробкой и поставить в прохладное место.

9.      Промаркировать бутыль с указанием назначения р-ра, его концентрации и даты приготовления.

 

ПРИГОТОВЛЕНИЕ 0,5% РАБОЧЕГО РАСТВОРА ХЛОРНОЙ ИЗВЕСТИ

ПРИГОТОВИТЬ: бутыль с 10% р-ром хлорной извести, ведро емкостью 10 л, мерный сосуд, деревянную лопатку, бутыль из темного стекла, резиновый фартук, перчатки, маску.

1.      Надеть фартук, маску, перчатки.

2.      В мерный сосуд отлить из бутылки 500 мл исходного 10%м р-ра хлорной извести и перелить его в ведро.

3.      Долить в ведро 9,5 л воды.

4.      Размешать р-р лопаткой.

5.      Перелить р-р в бутыль из темного стекла, промаркировать.

6.      Р-р хранить в специально отделенном месте, закрытой пробкой.

ПРИМЕЧАНИЕ: приготовление рабочих р-ров различных концентраций производить, пользуясь таблицей.

 

Рабочий р-р  в %	Кол-во 10% р-ра хлорной извести	Кол-во воды  (в литрах)
0,1	100 мл	9,9
0,2	200 мл	9,8
1,0	1 л	9,0
2,0	2 л	8,0

 

ПРИГОТОВЛЕНИЕ 3% РАСТВОРА ХЛОРАМИНА (1Л)

ПРИГОТОВИТЬ:  навеску хлорамина 30 гр, емкость 1 л, деревянную лопатку, бутыль из темного стекла, перчатки и маску, мерный сосуд, воду, воронку.

1.      Надеть маску и перчатки.

2.      В емкость поместить навеску хлорамина 30 гр.

3.      Влить в мерный сосуд 970 мл воды.

4.      Вылить воду в емкость с хлорамином.

5.      Перемешать р-р деревянной лопаткой, оставить на 2 часа, закрыв крышкой.

6.      Перелить р-р через воронку в бутыль из темного стекла с пробкой.

7.      Снять перчатки и маску, бутыль промаркировать.

ПРИМЕЧАНИЕ:

1)       Р-р хлорамина готовится непосредственно перед употреблением и используется однократно.

2)       Для приготовления р-ра хлорамина различных концентраций пользоваться таблицей.

 

Р-р в %	Кол-во хлорамина	Кол-во воды в (л)
1	10 г	990
2	20 г	980
3	50 г	950

 

ПРИГОТОВЛЕНИЕ  0,5% РАСТВОРА ДП2

ПРИГОТОВИТЬ: навеску порошка ДП2-50 г, ведро с крышкой, стеклянную бутыль емкостью 10 л, воронку, деревянную лопатку, перчатки, маску, воду.

1.      Надеть маску и  перчатки.

2.      Налить в ведро небольшое количество воды и осторожно поместить навеску.

3.      Долить воду до 10 л.

4.      Перемешать р-р деревянной лопаткой.

5.      Перелить р-р через воронку в бутыль из темного стекла, закрыть пробкой.

6.      Промаркировать приготовленный р-р.

ПРИМЕЧАНИЕ:

1)      0,5% р-р ДП2 используется для дезинфекции шприцев, игл, уборочного материала, помещений. Для дезинфекции мензурок, термометров используется 0,1% р-р ДП2, который готовится из расчета – 2,5 г/1 л воды.

2)      Р-р ДП2 превышает активность хлорамина в 5-6 раз, готовится на 24 ч. При попадании р-ра на кожу немедленно смыть проточной водой.

 

ПРИГОТОВЛЕНИЕ 0,5 МОЮЩЕГО РАСТВОРА (1Л)

ПРИГОТОВИТЬ: емкость 1-2 л, моющее средство «Лотос», 3% перекись водорода или 33% пергидроль, воду 1 л, мерный сосуд, нагревательный прибор, водный термометр, стеклянную бутыль, резиновые перчатки.

1.      Надеть перчатки, налить в мерный сосуд 795 мл воды.

2.      Перелить воду в емкость и подогреть до 50ºС.

3.      Добавить в воду навеску  моющего средства - - 5 гр, размешать.

4.      Налить в мерный сосуд 200 мл 3% перекиси водорода и добавить в емкость, перемешать, слить в стеклянную бутыль, промаркировать, снять перчатки.

ПРИМЕЧАНИЕ: моющий р-р готовится на 24 часа, его можно использовать не более 5-6 раз повторно до изменения его цвета на розовый. Перед использованием р-р необходимо подогревать до 50ºС. Для приготовления моющего р-ра с пергидролем взять: 33% пергидроля – 15 мл, 30% - 16 мл, 27,5% - 17 мл, порошок «Лотос» - 5 гр, воды – 980 мл, 979 мл, 978 мл соответственно.

 

ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОБРАБОТКА 

ПРИГОТОВИТЬ: использованные инструменты , емкость с 0,5% моющим р-ром, дистиллированную воду, реактивы для постановки проб на качество очистки, емкость № 1 с водой, емкость № 2 с дез. р-ром,   лоток, сетку стерилизатора , резиновые перчатки.

1.      Надеть перчатки и маску 

2.      Подогреть моющий р-р до 50ºС, поместить в него инструменты на 15 мин, закрыть крышкой.

3.       Промыть под проточной водой

4.      ополоскивание дистиллированной водой

5.      уложить в лоток

6.       Провести выборочный контроль качества обработки пробами на скрытую кровь (азопирамовая) и остатки моющего средства (фенолфталеиновая).

7.      Если пробы «-», провести ополаскивание  в дистиллированной  воде в течение 5 мин для освобождения их от примесей и солей и поместить на сетку стерилизатора.

8.      Поставить  в сушильный шкаф и просушить при t = 85ºС до полного исчезновения влаги.

9.      Упаковать инструменты для стерилизации.

ПРИМЕЧАНИЕ:

1)      Если ЛПУ имеет ЦСО, обработка  со второго этапа данного алгоритма, проводится персоналом ЦСО.

2)      При «+» пробах на скрытую кровь, проводить обработку с п.2.

3)      Изделие, дающее пол-ную реакцию на моющее средство, промыть повторно в проточной воде.

 

 

 

НАБР ЛЕКАРСТВЕННОГО ВЕЩЕСТВА ИЗ АМПУЛЫ

ПРИГОТОВИТЬ: коробки с лекарственным веществами в ампулах, шприц, иглы, резак или пилочку, лоток, стерильные ватные шарики спирт.

1.      Обработать руки, собрать стерильный шприц, присоединить иглу.

2.      Внимательно прочесть надпись на ампуле, дозу в-ва, на коробке – срок годности.

3.      Убедиться в прозрачности р-ра, приложив ампулу к рукаву белого халата.

4.      Взять ампулу в левую руку и пальцем правой руки стряхнуть р-р в нижнюю часть ампулы. Ампулу с масляным р-ром подогреть на водяной бане.

5.      Надпилить ампулу резчиком в средней части шейки.

6.      Ватным шариком, смоченным спиртом, обработать шейку ампулы и оотломать конец.

7.      Взять ампулу в левую руку между 2 и 3 пальцами, шприц – в правую и  не касаясь краев ввести в нее иглу шприца.

8.      Уложить шприц на ладонь и 1, 4 и 5 пальцами левой руки зафиксировать цилиндр шприца.

9.      Правой рукой оттянуть поршень и набрать нужное кол-во  лекарства таким образом, чтобы кончик иглы всегда находился в р-ре, ампулу убрать.

10.  Пропустить через иглу небольшое кол-во р-ра из шприца, держа шприц вертикально, на уровне глаз.

11.  Положить шприц на стерильную укладку.

12.  Перед инъекцией сменить иглу.

 

НАБОР ЛЕКАРСТВЕННОГО СРЕДСТВА ИЗ ФЛАКОНА

ПРИГОТОВИТЬ: флакон с 0,25% новокаином, шприц емкостью 10-12 мл, иглу Дюфо, пинцет, стерильные ватные шарики, спирт.

1.      Прочесть надпись на флаконе (наименование, концентрация р-ра, срок годности).

2.      Обработать руки.

3.      Вскрыть пинцетом центральную часть упаковки на пробку флакона.

4.      Ватным шариком, смоченным спиртом обработать резиновую пробку.

5.      Надеть на собранный стерильный шприц иглу Дюфо.

6.      Ввести иглу в резиновую пробку флакона.

7.      Флакон взять в левую руку в вертикальном положении вверх дном  так, чтобы первые 3 пальца  удерживали флакон, 4 и 5 – фиксировали цилиндр шприца у основания большого пальца.

8.      Убедиться, что кончик иглы находиться в р-ре.

9.      Оттягивая поршень, набрать нужное кол-во новокаина.

10.  Отсоединить шприц, оставив иглу в пробке флакона.

11.  Положить шприц на стерильную укладку.

 

ТЕХНИКА РАЗВЕДЕНИЯ АНТИБИОТИКОВ

ПРИГОТОВИТЬ: флакон пенициллина, шприц емкостью 10 мл, иглу Дюфо, 25%  р-р новокаина, лоток, стерильные ватные шарики, спирт.

1.      Прочитать название лекарственного в-ва, его дозировку, срок годности.

2.      Убедиться в пригодности новокаина.

3.      Обработать руки.

4.      Ватным тампоном, смоченным спиртом, обработать металлический колпачок флакона.

5.      Пинцетом вскройте центральную часть колпачка.

6.      Ватным тампоном, смоченным спиртом обработать резиновую пробку флакона, собрать шприц.

7.      Набрать в шприц необходимое кол-во 0,25% новокаина.

8.      Надеть пинцетом на шприц иглу, проколоть резиновую флакона с антибиотиком и ввести р-р новокаина во флакон.

9.      Отсоединить шприцы, иглу оставить во флаконе.

10.  Встряхнуть флакон с иглой до полного растворения антибиотика.

 

 

ТЕХНИКА ВНУТРИМЫШЕЧНЫХ ИНЪЕКЦИЙ

Объяснить ход манипуляции, получить согласие пациента. 1) Подготовьте руки к инъекции 2) Соберите шприц емкостью 5-10 мл, приготовьте иглы длиной 60-80 см (одну - для набора лекарства, другую - для инъекции). 3) Наберите лекарство из ампулы или флакона, смените иглу, проверьте ее проходимость. 4) Приготовьте два ватных шарика, смоченных спиртом. 5) Определите место инъекции (для этого мысленно разделите ягодицу на 4 части, проведя горизонтальную линию через большой вертел бедренной кости, а вертикальную - через седалищный бугор). Инъекции нужно выполнять в верхненаружный квадрант под углом 90° по отношению к поверхности кожи 6) Протереть место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными спиртом. Выполнять внутримышеные инъекции лучше в положении пациента лежа на животе или боку. Тогда наблюдается наиболее полное расслабление мышц. Выполняя инъекции стоя, следует посоветовать пациенту перенести тяжесть тела на противоположную месту инъекции ногу. 7) Левой рукой плотно зафиксировать мягкие ткани и, держа правой рукой, ввести иглу перпендикулярно кожной поверхности на глубину 5-6 см, оставив у канюли около 1 см. 8) Не перекладывая шприца из руки в руку медленно ввести лекарство. 9) Приложив к игле ватный шарик, смоченный спиртом, фиксировать иглу, быстро ее извлечь, место слегка помассировать ватным тампоном

 

РАСЧЕТ ДОЗЫ ИНСУЛИНА

ПРИГОТОВИТЬ: флаконы с инсулином простого и пролонгированного действия, инсулиновые шприцы и иглы.

1.      Прочесть надпись на флаконе с инсулином.

2.      Убедиться, что 1 мл инсулина содержит 40ЕД лекарственного в-ва (во флаконе 5 мл-200 ЕД).

3.      Внимательно изучить шкалу деления инсулинового шприца, на цилиндре которого нанесены  миллилитры и единицы действия (1 мл-40ЕД).

4.      Определить «цену» одного деления инсулинового шприца, для чего подсчитать число делений от подыольного конуса до метки «40», разделить «40» на число делений.

5.      Набрать в шприц нужную дозу инсулина. Например: цена деления шприца 2ЕД. Чтобы ввести больному 8 ЕД инсулина, необходимо набрать в шприц 4 деления лекарственного в-ва.

6.      Надеть иглу для подкожных инъекций.

7.      Положить шприц на стерильную укладку.

ПРИМЕЧАНИЕ:

1)      Если больному  назначен простой и пролонгированный инсулин, лекарства набирают в разные шприцы.

2)      Чтобы компенсировать потерю инсулина при удалении пузырьков воздуха из шприца, следует набрать немного больше.

3)      Центральная часть металлической крышки флакона не удаляется полностью

 

ТЕХНИКА ПОДКОЖНОЙ ИНЪЕКЦИИ

Специальная не требуется. Объяснить ход манипуляции, получить согласие.

1) Подготовьте руки к инъекции, надеть перчатки 2) Соберите шприц емкостью от 1 до 5 мл, приготовьте две иглы, одну для набора лекарств (с широким просветом), другую – длиной 20-30 мм, для инъекции. Надеть на шприц иглу с широким просветом. 3) Обработайте шейку ампулы спиртом, надпилите пилочкой и, зажав ваткой, смоченной спиртом, отломите. 4) Наберите лекарство из ампулы или флакона, придерживая ампулу или флакон на игле пальцем. Набрать от 1 до 5 мл (по назначению врача). 5) Смените иглу и, подняв шприц вертикально на уровне глаз, освободите его от лишнего лекарства и пузырьков воздуха, проверив ее проходимость. 6) Приготовьте два ватных шарика, смоченных спиртом. 7) Предложите пациенту освободить место инъекции. Это может быть наружная поверхность плеч и бедер, подлопаточная область, боковые поверхности передней брюшной стенки. Обработать место инъекции спиртом, сначала одним ватным шариком большую поверхность, затем другим - непосредственно место инъекции. Второй шарик не выбрасывайте, а зажмите в руке мизинцем. 8) Левой рукой соберите кожу в складку, а правой, держа шприц под острым углом (около 45º), введите иглу на глубину 2/3 длины,, срез иглы должен быть направлен вверх. Не перекладывая шприц в другую руку, введите лекарство. Вторую ватку со спиртом приложить к месту инъекции и, придерживая иглу пальцем, резким движением извлеките ее из мягких тканей. Левой рукой с ватным шариком слегка помассируйте место введения лекарства, чтобы оно лучше распределялось в подкожно-жировой клетчатке. При подкожных инъекциях возможны осложнения: инфильтрат, абсцесс, оставление обломка иглы в мягких тканях, масляная эмболия, аллергические реакции, ошибочное введение под кожу другого медикамента вместо назначенного.

 

 

ТЕХНИКА ВЕНЕПУНКЦИИ

С ЦЕЛЬЮ ВНУТРИВЕННОГО СТРУЙНОГО ВВЕДЕНИЯ В-В

 (внутривенная инъекция)

 

1. Сообщите пациенту необходимую информацию о лекарственном веществе, разъясните суть манипуляции, получите согласие.

2. Вымойте руки с мылом под краном, высушите их под электросушилкой или полотенцем, обработайте двумя ватными шариками, смоченными спиртом: один - для ладоней, другой - для тыльной части руки, надеть перчатки

3. Соберите шприц емкостью 10-20 мл стерильным пинцетом.

4.  Приготовьте две иглы (одна для набора лекарства, другая для венепункции).

5.  Прочитайте надпись, дозу на ампуле, наберите лекарство из ампулы. При наборе лекарств, применяемых в малых дозах (например сердечные гликозиды - применяют в дозах от 0,1 до 0,5 мл), - применяется растворитель 20-40% раствор глюкозы, изотонический раствор поваренной соли, вода для инъекций. Вначале наберите сердечные гликозиды, а затем раствор для разведения, для лучшего перемешивания раствора.

6.  Смените иглу, закрепите ее, проверьте ее проходимость.

7. Приготовьте не менее 5 шариков, смоченных спиртом.

8. Под локоть пациента подложите клеенчатую подушку, наложите жгут на плечо пациента (на 5 см выше локтевого сгиба на салфетку). При этом пульс на лучевой артерии на должен Изменяться. Кожные покровы ниже места наложения жгута багровеют, вена набухает. Если наполнение пульса на лучевой артерии ухудшилось - ослабить жгут, если локтевая вена прощупывается плохо, конечность не багровеет, следует сильнее затянуть жгут.

9. Обработайте перчатки спиртом.

10. Попросите пациента несколько раз сжать и разжать кулак, одновременно обработайте место инъекции одним ватным шариком, смоченным спиртом (широкая обработка от периферии к центру) ,

11. Возьмите шприц в правую руку так, чтобы указательный палец фиксировал иглу сверху, проверьте проходимость иглы и отсутствие воздуха в шприце.

12. Обработайте место инъекции вторым ватным шариком.

13. Натяните левой рукой кожу в области локтевого сгиба, несколько смещая ее к периферии, чтобы фиксировать вену. Пациента попросите сжать кулак.

14. Не меняя позиции шприца в руке, игла срезом вверх, шприц параллельно коже, делайте прокол кожи на 1/3 длины иглы, так чтобы она была параллельна коже, затем слегка меняете направление и осторожно пунктируйте вену, пока не ощутите ".попадание в пустоту"

15. Убедитесь, что игла в вене - потяните поршень на себя - в шприце должна появиться кровь.

16. Развяжите жгут левой рукой, потянув на себя один из свободных концов, попросите пациента разжать кулак.

17. Не меняя положения шприца, левой рукой нажмите на поршень и медленно введите лекарство, оставив в шприце 1 мм.

18. Прижмите к месту инъекции 3-й стерильный ватный шарик, смоченный спиртом, извлеките иглу, попросите пациента согнуть руку в локтевом суставе (ватку со спиртом оставляете на 5 минут, после чего вату со следами крови замочите в 3% растворе хлорамина).

 

 

ТЕХНИКА ВЕНЕПУНКЦИИ ДЛЯ ВЗЯТИЯ КРОВИ НА БИОХИМИЧЕКОЕ ИСССЛЕДОВАНИЕ И С ЦЕЛЬЮ КРОВОПУССКАНИЯ

Разъяснить ход манипуляции, получить согласие пациента.

ПРИГОТОВИТЬ: иглу Дефо, жгут, пробирки, штатив, салфетки, лоток, резиновые перчатки, маску, стерильные ватные шарики, спирт.

1.      Надеть маску, перчатки.

2.      Тщательно вымыть руки теплой водой с мылом и щеткой, обработать спиртом.

3.      Усадить или уложить больного в удобное положение.

4.      Попросить больного максимально разогнуть руку в локте, под локоть положить клеенчатую подушечку.

5.      Освободить верхнюю 1/3 плеча от одежды, обвернуть его салфеткой, наложить жгут, завязать. Свободные концы жгута должны быть направлены, в противоположную сторону локтевому сгибу.

6.      Убедиться, что пульс на лучевой артерии хорошо прослушивается.

7.      Попросить больного несколько раз сжать  и разжать кулак.

8.      Надеть маску, стерильные перчатки.

9.      Обработать область локтевого сгиба стерильным ватным шариком смоченным спиртом.

10.  Пропальпировать вены локтевого сгиба, выбрать наименее смещающуюся под кожей вену, снова обработать место спиртом.

11.  В правую руку взять игл Дефо, срезом вверх.

12.  Пропунктировать вену так же, как для внутривенной инъекции, положить под иглу стерильную салфетку.

13.  Предупредить больного, чтобы кулак не разжимал.

14.  Подставить к игле пробирку и набрать нужное кол-во крови.

15.  По окончании процедуры пробирку поставить в штатив, снять жгут, больному разрешить разжать кулак.

16.  Извлечь иглу, к месту пункции прижать вату со спиртом.

17.  Попросить больного сжать руку в локтевом суставе на 5 мин.

18.  Закрыть пробирку стерильной ватой, написать направление и прикрепить его к пробирке.

19.  Шприц и иглу поместить в  емкость № 1 для освобождения от крови.

20.  Отправить пробирку в лабораторию.

ПРИМЕЧАНИЕ:

1)      Венепункция для кровопускания проводится по такому же алгоритму, иглой Дефо, без шприца. После пункции вены, присоединить к канюле иглы соединительную трубку, опустив ее конец в емкость для сбора крови.

2)      Кровопускание проводится в присутствии врача. Кол-во выпускаемой крови не должно превышать 300-400 мл, на руку накладывается стерильная давящая  повязка.

3)      Перед выливанием крови в канализацию, засыпать ее на 1ч. сухой хлорной известью, из расчета 200 гр извести на 1 л крови.

4)      После взятия крови на ВИЧ-инфекцию, пробирки закрыть резиновой пробкой.

5)      При взятии крови для серологического исследования, используют стерильные пробирки.

6)      В течении дня после кровопускания за больным ведется наблюдение (пульс, внешний вид больного, АД).  

 

ЗАПОЛНЕНИЕ ОДНОРАЗОВЫХ СИСТЕМ

ДЛЯ ВНУТРИВЕННЫХ КАПЕЛЬНЫХ ВЛИВАНИЙ

Алгоритм действий при заполнении системы:

1. Проверите герметичность упаковочного пакета, срок годности, наличие колпачков на иглах. Осмотрите флакон с лекарством, убедитесь в названии, дозировке вводимого лекарства, в сроке годности.

2. Вымойте и обработайте руки двумя ватными шариками, смоченными спиртом (см.обработку рук).

3. Вскройте упаковочный пакет и достаньте систему (работать на рабочем столе), положите на крышку стерилизатора, на стерильную салфетку, стерильный лоток.

4. Алюминиевую крышку обработайте ватным шариком со спиртом, пинцетом, взятым из дез.раствора вскройте алюминиевую крышку флакона и обработайте резиновую пробку флакона ватным шариком со спиртом.

5. Снимите колпачок с иглы воздуховода (короткая трубка с фильтром) и введите ее до упора в пробку флакона, свободный конец воздуховода закрепите на флаконе аптечной резинкой на уровне дна флакона.

6. Закройте винтовой зажим, снимите колпачек с иглы на коротком конце системы и введите эту иглу в пробку флакона.

7. Переверните флакон и закрепите его на штативе.

8. Поверните капельницу в горизонтальное положение, снимите иглу с колпачком на конце длинной трубки системы и откройте зажим, медленно заполните капельницу до половины объема.

9. Закройте зажим и возвратите капельницу в исходное положение. Фильтр должен быть полностью погружен в жидкость для переливания.

10. Откройте зажим, медленно заполните систему (то есть длинную трубку) до полного вытеснения воздуха и появления капель из соединительной канюли в резиновой трубке.

11. Проверьте отсутствие пузырьков воздуха в системе - система заполнена.

12. Положите в стерильный лоток пять ватных шариков, иглу с колпачком, стерильную салфетку. Приготовьте две полоски лейкопластыря, жгут, подушечку, перчатки.

ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ДЕЙСТВИЙ ПРИ ПОДСОЕДИНЕНИИ:

1. Наденьте перчатки.

2. Наложите жгут, обработайте перчатки двумя ватным шариками, смоченными спиртом.

3. Обработайте двумя стерильными шариками место инъекции.

4. Произведите венепункцию иглой от системы.

5. Когда из канюли иглы покажется кровь, развяжите жгут, откройте зажим и "струя в струю" соедините иглу с системой,

6. Закрепите иглу двумя лейкопластырями.

7. Вытрите кровь ватным тампоном, смоченным спиртом, положите использованный тампон в 3% раствор хлорамина.

8. Отрегулируйте количество капель (40-60 в мин. или по назначению врача).

9. Закройте стерильной салфеткой. Во время вливания следите за самочувствием пациента, за иглой, чтобы не вышла из вены, за количеством капель, чтобы поступал раствор, не было перегиба трубок.

 

 

ВВЕДЕНИЕ ДОПОЛНИТЕЛЬНЫХ ЛЕКАР-ЫХ В-В

В ВЕНУ ВО ВРЕМЯ ВНУТРИВЕННОГО КАПЕЛЬНОГО ВЛИВАНИЯ

1.      Набрать в стерильный шприц лекарственное средство, надеть иглу.

2.      Обработать резиновую трубку системы ватным шариком со спиртом.

3.      Пережать резиновую трубку кровоостанавливающим зажимом, выше места прокола.

4.      Проколоть резиновую трубку иглой шприца, ввести лекарственное в-во.

5.      Снять зажим с трубки.

 

СМЕНА ФЛАКОНА

В СИСТЕМЕ ДЛЯ ВНУТРИВЕННОГО КАПЕЛЬНОГО ВЛИВАНИЯ

1.      Убедиться, что капельница заполнена лекарственным в-вом.

2.      Закрыть зажим системы.

3.      Извлечь иглу капельницы из пустого флакона, быстро ввести в пробку нового флакона и укрепить флакон на штативе.

4.      Извлечь воздуховод и ввести его в новый флакон, укрепить резинкой.

5.      Открыть  зажим системы, отрегулировать скорость введения р-ра.

6.      Использованный флакон снять со штатива.

7.      По окончании процедуры внутривенного капельного вливания:

1)      Зажим закрыть, надеть перчатки.

2)      Удалить иглу из вены, прижав место инъекции шариком со спиртом.

3)      Предложить больному согнуть руку в   локтевом суставе на 3-5 мин.

4)      Иглы, систему освободить от остатков крови и лекарственного в-ва, поместить в емкость №1 на 1 ч в 5% хлорамин.

5)      Трубки системы разрезать ножницами в продольном направлении, иглы деформировать.

6)      Вату и салфетки загрязненные кровью поместить в 3% хлорамин на 1 ч.

 

РОЛЬ МЕДСЕСТРЫ

В ПОДГОТОВКЕ И ПРОВЕДЕНИИ ПЛЕВРАЛЬНОЙ ПУНКЦИИ

Перед процедурой

1.      Провести с больными психотерапевтическую беседу, объяснить сущность манипуляции.

2.      Прокварцевать процедурный кабинет.

 

ПРИГОТОВИТЬ:  шприц Жане, пункционную иглу (длинной 8-10 см, диаметром 1-1,5 мм) с резиновой трубочкой, зажим, 2-3 стерильные пробирки со штативом, флаконы со спиртом и йодом, стерильный шприц 20 мл, иглы,  лейкопластырь, стерильные ватные шарики и салфетки, спиртовку, спички, 0,5% новокаин, 10% кофеин, ампулу кордиамина, нашатырный спирт, тонометр, емкость для плевральнойй жидкости, 2 стула.

1.      Подготовиться к манипуляции.

а) пригласить больного в процедурный кабинет, предложить ему сесть лицом к спинке стула, спиной – к источнику света, руку со стороны прокола положить на противоположное плечо или затылок, наклонить голову вниз.

б) вымыть руки горячей водой с мылом и щеткой, обработать спиртом, пригласить врача.

в) подать все необходимое врачу для обработки рук и кожи больного в месте прокола.

2.      Во время манипуляции помогать врачу:

1)      подать шприц с новокаином  для местной анестезии места прокола;

2)      надеть на пункционную иглу с трубочкой зажим и после введения врачом иглы в плевральную полость, присоединить шприц Жане; при первой пункции допускается эвакуировать не более полутора литров жидкости, в противном случае возможно развитие коллапса.

3)      собрать плевральную жидкость в стерильную пробирку для лабораторных исследований, предварительно обжигая ее края над пламенем спиртовки;

4)      следить за состоянием больного (возможен коллапс), кожными покровами, пульсом АД;

5)      поднести к носу ватку  нашатырным спиртом, по указанию врача ввести кофеин, кордиамин. 

3.      После пункции:

1)      обработать место прокола спиртом, йодом, наложить пластырь или стерильную повязку;

2)      проводить больного в палату, уложить в постель на 2 ч;

3)      вести наблюдение за состоянием больного, за повязкой;

4)      написать направление, контейнер с пробиркой отправить в лабораторию;

5)      убрать рабочее место.

 

РОЛЬ МЕДСЕСТРЫ

В ПОДГОТОВКЕ И ПРОВЕДЕНИИ

АБДОМИНАЛЬНОЙ ПУНКЦИИ

 

Перед процедурой

1.      Провести с больным психотерапевтическую беседу, разъяснить сущность процедуры, предупредить, что пункция проводится натощак.

2.      Прокварцевать кабинет.

ПРИГОТОВИТЬ: троакар с мандреном и дренажной резиновой трубкой, зажим, стерильный шприц 01-02 мл, иглы, 0,5%  новокаин, емкость для сбора асцитической жидкости, стерильные пробирки, перевязочный материал, стерильные ватные тампоны, пинцет, иглы с шовным материалом, скальпель, таз, полотенце, иглодержатель, перчатки.

1.      Предложить больному опорожнить мочевой пузырь  и кишечник.

2.      За 30 мин до процедуры ввести больному подкожно 0,1% атропин 1 мл и 1 мл промедола.

 

Приготовиться к манипуляции

1.      Пригласить больного в кабинет, усадить на стул, предложить расставить ноги, между ног поставить таз.

2.      Вымыть ноги, обработать спиртом, надеть маску, пригласить врача.

3.      Подать врачу все необходимое для обработки рук и кожи в месте прокола, стерильные перчатки.

 

Помощь врачу во время манипуляции

1.      Подать необходимые инструменты.

2.      После введения троакара и удаления мандрена, стягивать живот больного полотенцем для профилактики обмороков.

3.      Собрать жидкость в пробирку для лабораторных исследований.

4.      Следить за состоянием больного.

5.      По окончании выпускания жидкости подать врачу все необходимое для  наложения шва.

После процедуры

1)      Наложить на шов стерильную повязку, доставить больного в палату.

2)      Вести наблюдение за его состоянием, повязкой, соблюдением постельного режима.

 

ПРАВИЛА УХОДА ЗА ПОДКЛЮЧИЧНЫМ КАТЕТЕРОМ

Если у пациента имеется подключичный катетер, необходимо:

·         внутривенные вливания проводить путем прокалывания пробки иглой, предварительно обработав ее спиртом;

·        после каждого вливания заполнить катетер раствором гепарина (0,1 – 0,2 мл гепарина на 5 мл физиологического раствора), проколоть пробку тонкой иглой и удалить иглу со шприцем, не снимая пробки;

·        ежедневно обрабатывать кожу вокруг катетера спиртом и накладывать асептическую повязку.

 

ВЗЯТИЕ . ДОСТАВКА И ХРАНЕНИЕ  МАТЕРИАЛА  ДЛЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ  ИССЛЕДОВАНИЙ.

ИССЛЕДОВАНИЕ ОТДЕЛЯЕМОГО  ГЛАЗ

     ИССЛЕДУЕМЫЙ МАТЕРИАЛ. Гной. Секрет. Соскоб.

     КТО ПРОВОДИТ ВЗЯТИЕ. Врач-окулист. Лаборант-бактериолог.

     УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. Отделяемое рекомендуется собирать до местного  применения антибиотиков  и других медикаментов или не менее чем через 5-6 часов после отмены всех медикаментов и процедур.

      КОНЪЮНКТИВА. При наличии  достаточно обильного гнойного отделяемого используют стерильные ватные тампоны, которыми берут гной с внутренней  поверхности нижнего века движением к внутреннему  углу  глазной  щели. Необходимо  придерживать веки  руками, чтобы при  моргании  ресницы не касались тампона. Можно брать  платиновой петлей, предварительно прожжёной в пламени  спиртовки и  остуженной, или  стеклянными палочками. При  отсутствии видимого  гноя  следует  пользоваться тампонами, смоченными  стерильным  физраствором, чтобы  собрать как   можно  больше скудного  отделяемого.

      КРАЙ  ВЕК. Корочки  гноя  удаляют  пинцетом, берут  материал  из язвочек  у основания ресниц  тампоном.

      СЛЁЗНЫЕ МЕШКИ. После осторожного  массажа выделяемый  при  массаже  секрет берут  ватным тампоном.

      РОГОВИЦА. Материал  берут платиновой петлей  после  местного  обезболивания.

      В  кабинете  врача  с   соблюдением  правил  асептики  производят  посев  на  соответствующие  питательные  среды  и   делают  мазки. Для  мазков  материал  с платиновой  петли   или  с  тампона  переносится  на  предметные стёкла. Мазки  высушивают  и   маркируют.

     УСЛОВИЯ ДОСТАВКИ И  ХРАНЕНИЯ. Материал, собранный  в  кабинете  врача, доставляется  в  лабораторию  не  позже  2 часов с  момента  посева. Тампоны  могут храниться  в  течении  24 часов  в   холодильнике (температура +4с).

        При  подозрении на дифтерию  тампоны  доставляются  в  лабораторию  не   позднее 3 часов, при  использовании  транспортной   среды – до 24  часов, в осенне-зимний  период  в   сумках  с  грелками.

         При подозрении на  гонококковую  инфекцию  срок  доставки  материала-1-2 часа, при использовании  транспортной  среды – до 24 часов при  условии  хранения в  холодильнике  при  температуре +4с.

 

 

ИССЛЕДОВАНИЕ  ОТДЕЛЯЕМОГО  УШЕЙ.

.          ИССЛЕДУЕМЫЙ  МАТЕРИАЛ. Гной. Серозное отделяемое.

            КТО  ПРОВОДИЛ  ИССЛЕДОВАНИЕ. Врач.

           УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. Кожу  уха вокруг  наружного слухового  прохода протирают  60%-70% спиртом. Отделяемое берут стерильными  ватным тампоном, помещают в стерильную пробирку.

            УСЛОВИЯ ДОСТАВКИ И   ХРАНЕНИЯ. Материал должен  быть  доставлен в течение  1-2 часов в  лабораторию. При  невозможности  доставки в  указанный  срок материал может   храниться в  холодильнике при  температуре  +4с  до  24 часов.

             ПРИМЕЧАНИЕ. Материал  берут из правого и левого  уха  разными  тампонами в  разные  пробирки.

 

ИССЛЕДОВАНИЕ  ЖЕЛЧИ

УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. Желчь берёт  медсестра при  зондировании   12-перстной кишки . Сбор осуществляется в  три  отдельные стерильные пробирки  по  5-10 мп  каждой порции: дуоденальное  содержимое (порция А), пузырная  желчь  (порция В), желчь из  желчных  протоков (порция С).

УСЛОВИЯ ДОСТАВКИ  И  ХРАНЕНИЯ. Доставка производится  как можно  быстрее,  но  не  позднее  2 часов с  момента взятия. Хранение в  течение 24  часов при   температуре +4с.

 

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ  ИССЛЕДОВАНИЕ  КРОВИ.

     УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. Кровь  у  больного берёт процедурная сестра в процедурном  кабинете или в палате в  зависимости  от состояния  больного. Рекомендуется  кровь для посева брать по  возможности до начала антибиотикотерапии  или  через  12-24 часа  после последнего  введения  препарата больному.

     Посев проводится  во   время  подъёма  температуры, в начале  появления лихорадки. Рекомендуется  брать  кровь  несколько  раз (2-3) с  интервалом  приблизительно  в 1 час, или  несколько  раз  в  сутки  (2-4).

      При  взятии  крови  особенно  строго соблюдают  требования  асептики. В качестве дезинфектантов  могут  быть  использованы  70% этиловый  спирт,  10% настойка  йода, 10% поливинил-йодат,  0,5%  хлоргексидин  в 70%  спирте   (спирт и  хлоргексидин  используется  у   пациентов  с  аллергией  на  йод).

     ПОДГОТОВКА  ПАЦИЕНТА  ДЛЯ ВЗЯТИЯ  КРОВИ: участок  кожи  над  пунктируемой веной с  особой  тщательностью  обрабатывается  ватным  тампоном  с    70% спиртом, затем  тампоном  с  10% настойкой  йода  от  центра к  периферии. Перед взятием  крови  дезинфицирующее средство   должно  испариться с  поверхности  кожи. Нельзя   пальпировать вену в  месте  пункции. После  взятия  крови йод  удаляют  тампоном  с  70% этиловым  спиртом  во  избежание  воспаления  кожи.

Для  взятия  крови  необходимо  пользоваться  шприцами  для   одноразового  пользования или шприцами, простерилизованными в   центральной  стерилизационной. Освобождение их  от  упаковки  производится  только непосредственно  перед  употреблением.

Нельзя  проверять проходимость простерилизованного  шприца  и  иглы  перед  использованием  воздухом.

При  наличии у  больного постоянного  подключичного  катетера или  капельницы в  вене можно  воспользоваться  ими для  получения  крови  только в  течение  первых  трёх  дней, так как наступает  контаминация  катетера. Некоторому количеству  крови дают  свободно  стечь  в  пробирку, затем  набирают  кровь в  шприц  для  посева.

Посев  крови  производят  у  постели  больного или в  процедурном кабинете  над  спиртовкой.

Кровь берётся  у  взрослых  в   количестве  5-20 мл  и  из шприца  без иглы над спиртовкой засевается  во  флаконы с  питательными средствами  ( отношение крови  и   среды 1: 10 ) . Содержимое флаконов тщательно  перемешивается  во  избежание  образования  сгустков   крови. У  детей  кровь  берется  в  количестве  1-15 мл. Взятие  крови для максимального  выделения  различных микроорганизмов целесообразно производить на несколько  питательных  сред. Минимально   рекомендуется  2 флакона для  культивирования  аэробных и  анаэробных   микроорганизмов. Верх  крышки   флаконов, которые   закрываются  алюминиевой фольгой  или бумагой, перед  сливанием крови  во  флакон  должен  быть  тщательно  дезинфицирован  70% спиртом  в  течении  1 минуты.

 

УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ  И  ДОСТАВКИ. Кровь, взятая во флаконы со средой, доставляется  в лабораторию немедленно  или  может  храниться в  термостате или при комнатной температуре и  доставляется  в лабораторию в день  взятия крови .

 

ИССЛЕДОВАНИЕ КАТЕТЕРОВ

Исследуемый материал. Периферические  и  центральные венозные  и  артериальные катетеры.

Кто проводит исследование.  Врач-хирург, медсестра.

Условия  взятия. Область кожи вокруг катетера обрабатывают  тампоном с 70% спиртом.  В условиях асептики  извлекают  катетер стерильными инструментами  отрезают 5см,  дистального  (или дистального и проксимального ) конца катетера прямо в стерильную пробирку,  желательно с завинчивающейся крышкой, или в   стерильную чашку.

Условия доставки и хранения. Кусочки катетера немедленно доставляют в лабораторию, чтобы предотвратить высыхание. Хранить  при температуре +4с в течении  24 часов

 

ВЗЯТИЕ. ДОСТАВКА И ХРАНЕНИЕ  БИОМАТЕРИАЛОВ ДЛЯ ОСНОВНЫХ  МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ  ИССЛЕДОВАНИЙ.

    Взятие и  транспортировка проб является одним из ответственных этапов в работе бактериологических  лабораторий. Вся работа  бак. лабораторий может  оказаться не только бесплодной, но и приносящей  вред больному, если допущена ошибка на  самом первом этапе  взятия и  транспортировки проб.

 

ОБЩИЕ ТРЕБОВАНИЯ К ОТБОРУ И  ТРАНСПОРТИРОВКЕ  ПРОБ:

     

1.      Знание оптимальных сроков для взятия  материала на  исследование.

2.      Производить взятие материала, учитывая место максимальной покализации  возбудителя, пути выделения в  окружающую среду.

3.      Отбор материала  для исследований в  необходимом  и  достаточном  объёме  с  обеспечением условий, исключающих  контаминацию  проб.

4.      По  возможности взятие материала до применения  антибиотиков и  других  химиотерапевтических  препаратов  или после  отмены  антибиотиков через  2-3 дня.

5.      Материалы,  подлежащие  бак. исследованию, собирают  в стерильную посуду, снабжают этикеткой с  фамилией  обследуемого и  наименованием  материала. В сопроводительном документе-направлении  необходимо указать, какое учреждение и  отделение  направляет материал,  фамилию, имя, отчество и  возраст обследуемого, предполагаемый диагноз или показания к  обследованию, антибактериальную терапию, если  она проводилась, дату и час взятия пробы, материал, фамилию и должность лица, направляющего материал.

6.      Материал  доставляется  проинструктированным  медработником  в  контейнерах, не допуская опрокидывания. При  транспортировке не допускается  смачивание ватных пробок  и  замораживания  материала.

7.      Материал доставляется  немедленно или в течение 1-2 часов. При  невозможности  доставки в  указанные сроки  биоматериал  хранят в  холодильнике, кроме крови и  материала, исследуемого на  наличие менингококка и   дифтерии. При  увеличении  времени доставки  проб до  48 часов необходимо использовать транспортные  среды.

8.      Категорические запрещается  доставка  материала в  лабораторию обследуемыми  лицами.

9.      Доставленные в лабораторию пробы должны быть  размещены в специально отведенном месте для  приёма  биоматериала.

10.  В  случае  несоблюдения  условий  образцы  не подлежат  обработке  и об этом  сообщается  лечащему  врачу  для  повторного  проведения  исследования.

 

ВЗЯТИЕ. УСЛОВИЯ  ХРАНЕНИЯ И  ТРАНСПОРТИРОВКИ  МОКРОТЫ ДЛЯ  ИССЛЕДОВАНИЯ

МЕТОДИКА СБОРА МОКРОТЫ   И   ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА

       ВРЕМЯ  ВЗЯТЯ МОКРОТЫ: утром  (8-8 часов  утра), натощак.

        Обычно собирают   утреннюю порцию мокроты до приёма пищи, полученную путём откашливания. Следует избегать попадания в образец слюны и  секрета  носоглотки  или синусов. Мокроту собирают в чистую сухую широкогорлую склянку.

        Предварительно больной должен прополоскать рот и  глотку кипячёной водой  иии вычистить зубы. Если мокроту нельзя получить путём  откашливания, то получают материал из бронхов (как для цитологического исследования).

        УСЛОВИЯ ДОСТАВКИ И ХРАНЕНИЯ. Желательно доставить в лабораторию  и исследовать свежевыделенную мокроту как можно скорее, хотя для некоторых исследований (например, исследование на микобактерии туберкулёза ) отсрочка не приносит большого вреда. При невозможности  немедленного исследования  мокроту необходимо хранить в прохладном месте, лучше – в холодильнике. Нецелесообразно  собирать мокроту за большой промежуток времени  (более суток), так как длительное состояние приводит к размножению бактерий и аутолизу  элементов мокроты.

 

          ПРИМЕЧАНИЕ: для обеззараживания мокроты  и посуды, в которой она хранилась, используют  5% раствор хлорамина.

         

           ИССЛЕДОВАНИЕ   МОКРОТЫ НА МИКРОБАКТЕРИИ  ТУБЕРКУЛЁЗА.

            Мокроту необходимо собирать в стерильную сухую посуду с крышкой. Больной должен  избегать загрязнения мокротой  наружных  стенок банки. Если мокрота выделяется в скудном количестве, следует дать отхаркивающее средство накануне сбора и утром, можно применять  аэрозольную ингаляцию горячего солевого  гипертонического раствора в течение  10-20  минут. Нужно следить за тем, чтобы  не было  передачи  инфекции  от одного  больного другому  при  использовании  распыляющего  прибора.

 

УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ БИОЛОГИЧЕСКИХ  ЖИДКОСТЕЙ   ДЛЯ  БИОХИМИЧЕСКИХ  ИССЛЕДОВАНИЙ.

            Взятие всех  биожидкостей  для  биохимических  исследований, так  же, как  и для других, должно осуществляться с соблюдением  всех  правил  асептики  и  антисептики  и  санитарно-эпидемиологического  режима  в  соответствии  с  действующими  нормативными  документами  Минздрава.

 

СТАНДАРТ УСЛОВИЙ ВЗЯТИЯ  КРОВИ:

-         время взятия с  7 до  9 утра;

-         взятия проводится натощак;

-         -    исключить физическую  активность  и   нагрузки  за  3 дня до исследования;

-         исключить  приём алкоголя;

-         исключить приём  лекарств, если они даются не  по жизненным  показаниями и  могут  оказать  влияние на  результаты. Продолжительность исключения  лекарства  зависит  от  периода выведения  его из организма;

-         за  5 минут  до  взятия обследуемый  находится в покое (сидит или  лежит);

-         время наложения жгута  не превышает  1 минуты;

-         пальцы руки не сжимать и не разжимать;

-         не  похлопывать ладонью по  месту взятия  с целью увеличения  притока крови к нему;

соблюдать определённые места  для взятия  крови  (локтевая вена, вены предплечья, тыльной  стороны  кисти), соблюдать  методику взятия.

 

Если необходимо взять кровь для нескольких видов лабораторных исследований, то порядок взятия  крови  должен быть следующим:

1.      Кровь для микробиологических  исследований.

2.      Нативная кровь, без  антикоагулянтов и других  добавок  для  получения  сыворотки ( для  большинства компонентов биохимических  исследований).

3.      Цитратная кровь  (для коагулологических   исследований).

4.      Кровь с ЭДТУК (для гематологических  исследований).

5.      Кровь с ингибиторами гликолиза  (фториды и т.д.) для  исследования глюкозы.

Основное правило: кровь которая берётся  без антикоагулянтов, должна быть взята до крови с антикоагулянтами  во  избежание  загрязнений  ими.

Если для исследований  используют  плазму  или   форменные  элементы  крови, кровь забирают в  мерные пробирки или  пробирки  имеющие  метку, до которой должна быть  набрана кровь. В пробирки  предварительно вносят  антикоагулянт. Тотчас после взятия крови  необходимо закрыть пробирку пробкой и несколько раз тщательно перемешать кровь, не взбалтывая её (опрокидывая пробирку сначала пробкой вниз, затем пробкой вверх).

Сыворотка и плазма должны быть свободны от гемолиза.

 

СОБЛЮДЕНИЕ МЕР, ПРЕДОТВРАЩАЮЩИХ ГЕМОЛИЗ

   

-         соразмерное  давление вен при помощи жгута;

-         взятие  крови из вен острыми иглами  с коротким срезом, достаточно большого диаметра;

-         кровь вытекает в пробирку  для сбора по её стенкам самотёком, исключить аспирацию, выдувание крови, прерывание тока крови;

-         взятие крови в химически чистые пробирки, без примесей детергентов, моющих средств, воды;

-         исключить: сильное нагревание или переохлаждение, на более поздних этапах –превышение сроков обработки крови с момента взятия; для получения сыворотки или плазмы – недостаточно полное центрифугирование.

В случае проведения вливаний кровь  следует взять до вливания, если это невозможно, то взятие производится из вен другой руки; если это невозможно, то из той вены, в которую проводится вливание, но ниже места вливания. При взятии крови после вливания  оно должно проводиться  не ранее чем через 1 час для растворов, обогащённых углеводами, растворов с аминокислотами  или  заменителями  белков и электролитами через  8 часов – для жировых эмульсий.

          При  взятии крови через катетер, находящийся в сосуде, канюлю промывают физраствором  объёмом, соразмерным с объёмом катетера,  первые 5 мл крови  перед взятием удаляют для исключения загрязнений. Следует учесть вводимые антикоагулянты, вещества, содержащиеся  в растворах ( глюкоза, калий ), эффект разведения крови, которые могут быть источником ошибок.

           Количество собираемой крови  зависит от количества затребованных анализов  и  требуемых для них  объёмов  биоматериала. Рекомендуется получение количества крови ,  в 2 раза превышающее необходимое для анализа (минимально). В настоящее время для выполнения биохимических исследований  на анализаторах  достаточно  4 -5 мл крови при  получении сыворотки  и  3-4 мл – для получения  плазмы.

 

УСЛОВИЯ ТРАНСПОРТИРОВКИ  И  ХРАНЕНИЯ  МАТЕРИАЛА   БИОЖИДКОСТЕЙ  ДЛЯ БИОХИМИЧЕСКИХ  ИССЛЕДОВАНИЙ.

 

      Любую биожидкость  рассматривают как потенциально инфекционный    материал, соблюдая все соответствующие правила обращения с ней  при транспортировке,  хранении и обработке. Биожидкости от инфекционных больных, а также биожидкости , содержащие радиоактивные изотопы, должны иметь особую маркировку, обращаться с ними надо с особой осторожностью.

 

       При взятии  материала следует правильно заполнить направление. Пробирки и сопровождающие их документы, этикетки не должны быть спутаны. Этикетки на пробирках с кровью или направляемой мочой  должны быть наклеены таким образом, чтобы содержимое пробирок просматривалось и можно было  контролировать заполнение пробирки  заданным объёмом при взятии. Пробки, которыми закрываются пробирки, должны легко удаляться. Пробирки  должны  центрифугироваться с этикетками на них. Заполнение пробирок  должно быть таковым, чтобы, с одной стороны, предоставлять возможность перемешивать содержимое пробирок  при взятии крови, а с другой стороны – уменьшать вибрацию и встряхивание при транспортировке.

        Полученная биожидкость должна быть доставлена  в лабораторию как можно скорее. В направлении указывается время и дата взятия биожидкости.

       На всех этапах транспортировки  и обработки кровь должна находиться в пробирках, закрытых крышками, для предотвращения испарения, загрязнения микробами и  различными веществами извне.

          Пробирки при доставке должны  располагаться вертикально, к верху крышками, что способствует сохранности проб ускорению образования сгустка при получении сыворотки, уменьшает встряхивание при транспорте и опасность возникновения гемолиза.

           Пробирки не следует заполнять до краёв. Цельную кровь, полученную без антикоагулянтов, не следует помещать в холодильник до доставки в лабораторию во избежание гемолиза. Центрифугирование  производится не позднее, чем через 1 час после взятия биожидкости.

 

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ  ИССЛЕДОВАНИЕ  ИСПРАЖНЕНИЙ.

 

КТО ПРОВОДИТ ВЗЯТИЕ. Медсестра.

УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. При инфекционных  заболеваниях  (ОКИ, тифо-паратифозные заболевания, дизентерия )  и  внутрибольничных  инфекциях желудочно-кишечного тракта материал  на бактериологическое исследование (рутинное) берётся с первых часов и дней  поступления больного   или нахождения больного в лечебном   учреждении до начала антибиотикотерапии. Взятие образцов производится столько раз, сколько будет стул. Минимально  2 раза. Испражнения для посева  рекомендуется  брать сразу  после дефекации. Сбор их  осуществляется  из  судна, горшка, пелёнки, специальных потоков  или  другой  посуды, тщательно дезинфицированной  осветлённым раствором хлорной извести  и  многократно  омытой   горячей  водой  до  полного удаления  следов  дезинфекантов. Из  посуды  испражнения  забирают стерильным  деревянным шпателём  или стерильной  палочкой   в  стерильные  банки  или ёмкости  с   широким  горлом с  плотно  закрывающейся, исключающей  возможность  загрязнения  пробкой, стерильные пробирки без консервантов или со средой. В отбираемые пробы  включают  имеющиеся патологические  примеси  (гной, слизь, хлопья). Объём  испражнений, собираемых в пробирку со средой, не должен  превышать  1/5 объёма  среды.

     При  исследовании на ДИСБАКТЕРИОЗ  испражнения  собирают из  судна, обработанного только  сухим  жаром  или  кипячением в стерильную ёмкость, с широким горлом в количестве приблизительно 2-4 грамма без консерванта.

      При невозможности получения испражнений  после  дефекации материал  собирают  непосредственно из прямой кишки с  помощью  ректальных ватных  или  ватно-марлевых  тампонов,  укреплённых на  деревянной  палочке или  проволочной  петле. Ректальный тампон вводят  в  прямую  кишку  на  8-10 см  и  затем  помещают в стерильные пробирки  со средой.

      УСЛОВИЯ  ХРАНЕНИЯ И  ДОСТАВКИ. Испражнения доставляются в лабораторию  непосредственно после сбора  не  позднее  1-2 часов. При отсутствии  этих условий  материал  сохраняется  при температуре  +2  -  6с  в течение  24 часов.

 

ЛАБОРАТОРНАЯ  ДИАГНОСТИКА  ДИФТЕРИЙНОЙ  ИНФЕКЦИИ.

ВЗЯТИЕ И  ДОСТАВКА  МАТЕРИАЛА.

 

1.      Взятие материала  должны производить специально  обученные медицинские работники  лечебно-профилактических  учреждений.

2.      При исследовании на дифтерию  обследуют ротоглотку и  нос. При дифтерии редких локализаций (глаз, ухо, рана, кожа, влагалище) помимо поражённых участков, следует брать материал  также с  миндалин и  из  носа.

3.      Взятие  материала  осуществляют с помощью  стерильных ватных  сухих  тампонов.

4.      Материал из ротоглотки  и носа  берут  отдельными тампонами, натощак или не  ранее, чем через два часа после еды, при хорошем освещении, с  использованием  шпателя, не касаясь тампоном языка   и  внутренних поверхностей  щёк и  зубов. Одним тампоном собирают материал с поражённых  участков ротоглотки – миндалин, а при  необходимости – с  дужек мягкого нёба, нёбного  язычка  или задней стенки глотки. При наличии налётов  материал следует брать с границы поражённых и здоровых тканей, слегка нажимая на них тампоном.  Для взятия материала из носа  используют  другой  тампон, который вводят сначала в один, а потом в другой  носовой  проход, не касаясь  крыльев носа снаружи.

5.      При ларингоскопии  материал  (слизь, плёнка) собирают непосредственно из гортани. Материал с поражённых участков следует собирать сухим тампоном  после  удаления корочек или  струпа.

6.      Тампоны должны быть доставлены  в лабораторию   не позднее  3-х часов с момента взятия  материала. При проведении  обследования  контингентов  в отдалённых  бактериологических  лабораторий  районах, рекомендуется  засевать материал  на чашки с питательной  средой  или  использовать  транспортную среду.

7.      В случае  использования транспортной  среды  материал собирают сухим тампоном, опускают в пробирку со средой   и  следят  за  тем, чтобы пробка тампона  не  намокла.

8.      В холодное время  года исследуемый материал  доставляют в  бак. лаборатрию  в  сумках—термосах, во избежание  его замерзания.

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ  ИССЛЕДОВАНИЕ  ОТДЕЛЯЕМОГО  ИЗ  ДЫХАТЕЛЬНЫХ  ПУТЕЙ.

 

         ИССЛЕДУЕМЫЙ  МАТЕРИАЛ. Мокрота.

          КТО  ПРОВОДИТ  ВЗЯТИЕ. Медсестра.

          УСЛОВИЯ  ВЗЯТИЯ. Перед  откашливанием  больной  чистит  зубы  и  полощет рот  и  горло кипячёной  водой. Утреннюю  мокроту, выделяющуюся во время  кашля, собирают  в  стерильную  банку  или  флакон  с  широким  горлом  и  плотно  прилегающей  крышкой.

          Если мокрота отделяется  плохо, рекомендуется накануне назначить  отхаркивающее  или дать вдохнуть  25мл   3-10% физраствора  через  распылитель.

            УСЛОВИЯ  ХРАНЕНИЯ  И  ДОСТАВКИ. Мокрота  по возможности  доставляется в  лабораторию  без промедления. Хранение при  комнатной  температуре 2часа, в  холодильнике при  температуре  +4 –6  -- 24 часа.

              ИССЛЕДУЕМЫЙ  МАТЕРИАЛ. Промывные воды бронхов.

              КТО ПРОВОДИТ ВЗЯТИЕ. Врач.

              УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. При   бронхоскопии  вводят  до  7мл  физиологического  раствора с  последующим  его отсасыванием,  2-3 мл  полученного  физраствора с секретом  собирают в  стерильные пробирки.

               УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ  И  ДОСТАВКИ. Смотри  мокроту.

                ИССЛЕДУЕМЫЙ  МАТЕРИАЛ. Носоглоточная  слизь, гнойное отделяемое из  миндалин, отделяемое  из  носа.

                 КТО  ПРОВОДИТ ВЗЯТИЕ. Врач, специально  обученный медперсонал.

                  ВЗЯТИЕ МАТЕРИАЛА. Проводится  натощак  или не ранее, чем  через  2-4 часа  после еды. Пациент  сидит  против  источника  света, корень языка  придавливают  шпателем, материал берут стерильным тампоном, не касаясь языка, слизистой щёк  и  зубов.

                При исследовании  носоглоточной  слизи  на  МЕНИНГОКОКК  пользуются изогнутым  стерильным ватным  тампоном. Тампон вводят  концом   к  верху  за  мягкое  нёбо  в  носоглотку  и  проводят  3 раза  по задней стенке. Материал может быть  засеян  на  месте  взятия  на чашки Петри с питательной средой

                 У больных ангинами  при подозрении  на дифтерию  материал  берут с миндалин  сухим  тампоном. При наличии  налётов  материал следует брать с  границы  здоровых и поражённых   тканей, слегка  нажимая на них тампоном.

                  Исследование материала на общую  обсемененность, при  ТОНЗИЛЛИТАХ  и   ФАРИНГИТАХ  проводят  одним тампоном  одновременно: с правой  миндалины  переходят на нёбную  дужку , язычок, левую нёбную   миндалину  и   к задней  стенке глотки. Предпочтительно собирать материал двумя  тампонами, один из которых  используют для приготовления  мазка, другой – для  культурального  исследования.

                   При взятии  материала из носа  тампон  вводят  в  носовой ход  на  2см  и , поворачивая, собирают  носовую слизь. При  подозрении  на  дифтерию  пользуются одним и тем же тампоном , который помещают  в  стерильную пробирку  или  в  пробирку с транспортной  средой.

                    УСЛОВИЯ  ХРАНЕНИЯ И  ДОСТАВКИ. Материал  на сухих  тампонах  и  засеянный  на  чашки  Петри  доставляется  в  лабораторию  немедленно или в течение  3 часов.  Материал  на  тампонах, смоченных  транспортной средой, может быть  доставлен  в  лабораторию в  течение  24 часов.

                     При подозрении на дифтерию  материал в осенне-зимний период доставляют в бактериологическую лабораторию в   сумках  с грелками.

                       При подозрении на менингит  материал доставляют в лабораторию немедленно  или в течении 3 часов в утеплённых  биксах, применяя  грелки  (температура  35-40с) и  немедленно  помещают в термостат  (температура  37с)

 

ВЗЯТИЕ. УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И  ТРАНСПОРТИРОВКИ  ВЫДЕЛЕНИЙ ПОЛОВЫХ  ОРГАНОВ  ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЙ.

ИССЛЕДОВАНИЕ ВЫДЕЛЕНИЙ  ЖЕНСКИХ  ПОЛОВЫХ  ОРГАНОВ.

ИССЛЕДУЕМЫЙ МАТЕРИАЛ: отделяемое влагалища, бартолиновых желез.

МЕТОДИКА ВЗЯТИЯ  И  ПОДГОТОВКА  ОБСЛЕДУЕМЫХ.

 Взятие материала проводит  врач.  ПОДГОТОВКА ПАЦИЕНТА. В течение  24  часов перед исследованием  исключить спринцевания  и  применение  внутривагинальных   терапевтических  средств.

           МЕТОДИКА  ВЗЯТИЯ. Перчатки врача должны быть без талька, зеркала – без смазки, смочены  физиологическим раствором. Материал берут из задне – бокового  свода  влагалищным  шпателем  или  насасывают  стерильной  стеклянной  пипеткой  с  резиновой  грушей. Материал равномерно размазывается  на предметном стекле, мазки высушивают на  воздухе и  доставляют  в  лабораторию с сопроводительным  бланком.

ПРИМЕЧАНИЯ:

1.      Нельзя брать материал ватным тампоном.

2.      Нельзя брать  материал во время  менструации.

3.      При  необходимости  получения большого количества материала  содержимое можно брать гинекологической  ложечкой, при этом нельзя брать соскоб.

4.      При исследовании  на  трихомонады  каплю  отделяемого (влагалища, уретры)  наносят наа предметное стекло и немедленно доставляют в лабораторию для обнаружения подвижных форм  трихомонад.

 

ИССЛЕДОВАНИЕ  СЕКРЕТА  ПРЕДСТАТЕЛЬНОЙ  ЖЕЛЕЗЫ.

ИССЛЕДУЕМЫЙ  МАТЕРИАЛ:  секрет предстательной  железы.

ВЗЯТИЕ  МАТЕРИАЛА. Материал  получают после  энергичного  массажа  предстательной  железы, проводимого врачом в течении  3-4 минут. Секрет  собирают в  чистую  сухую пробирку. Если в  результате проведения  массажа  выделений не  получено, то после массажа собирают  первую порцию мочи и  в ней  изучают структуры, характеризующие  состояние  предстательной  железы.

 

ИССЛЕДОВАНИЕ  СЕМЕННОЙ  ЖИДКОСТИ.

ИССЛЕДУЕМЫЙ  МАТЕРИАЛ: семенная  жидкость (эякулят)

 ВЗЯТИЕ  МАТЕРИАЛА. Получение  эякулята  происходит  с  помощью вибрационного устройства в  специальном  кабинете. Оптимальный  результат  даёт  исследование  секрета, полученного  после 3-4  дневного  полового воздержания. Собирают  материал  в  чистый , стеклянный, градуированный  сосуд, исследуют  либо сразу  после получения, либо доставляют в лабораторию в  охлаждённом  состоянии  как  можно скорее ( в пределах  1 часа после  семяизвержения).

 

ПРИМЕЧАНИЯ:

1.      Получить эякулянт можно и фракционным  методом,  т.е.  2-3 порциями, в этом  случае первая порция  представляет собой  секрет предстательной железы, последующие – секрет  семенных пузырьков.

2.      Недопустимо собирать и доставлять эякулянт  в  лабораторию в  презервативе, т.к.  в  этом  случае  происходит  быстрое  разрушение  сперматозоидов.

 

ВЗЯТИЕ. УСЛОВИЯ  ХРАНЕНИЯ  И  ДОСТАВКИ  КАЛА  ДЛЯ  ИССЛЕДОВАНИЯ.

ПОДГОТОВКА  ПАЦИЕНТА.

     Перед исследованием  кала  отменяется приём медикаментов, влияющих  на  секреторные процессы, а также  усиливающих  перистальтику  кишечника, и  медикаментов, примеси  которых в  кале  изменяют его  цвет  или  мешают  при  микроскопическом или химическом  исследовании  (слабительные, ваго – и симпатикотропные  средства, сульфат  бария, препараты  висмута,  железа, каолин,  ректальные свечи, приготовленные на жировой основе, ферментные препараты, Н2—блокаторы  и другие препараты), влияющие  на процессы  переваривания и  всасывания.

      Нельзя  направлять  кал на  исследование  после клизм, а  также рентгенологического  исследования  желудка и  кишечника  ( примесь бария); исследование кала желательно проводить  не  ранее, чем  через 2 суток  после  рентгенологического  исследования.

       При исследовании на степень усвоения  питательных веществ необходимо в  течение  4-5 дней соблюдать  унифицированную  диету, содержащую  установленное количество различных  пищевых продуктов. Можно использовать две  диеты – Шмидта  и  Певзнера; диета Шмидта  является  щадящей,  диета Певзнера  представляет максимальную  пищевую нагрузку  для  здорового человека.

        ДИЕТА  ШМИДТА:  дневной рацион  (распределяется  на 5 приёмов пищи);  1 – 1,5 л. молока, 2-3 яйца  всмятку,  белый хлеб с маслом,  125г  рубленого мяса,  200г  картофельного пюре, овсяная каша; общая  калорийность – 2250кал.

         ДИЕТА  ПЕВЗНЕРА: дневной рацион: 200г белого и  200г  чёрного хлеба, 250г  жареного мяса, 100г масла, 40г  сахара, жареный картофель, морковь, салаты, квашеная капуста, гречневая и рисовая каши, компот, свежие фрукты;  общая калорийность – 3250 кал.

          При невозможности  использовать указанные диеты  достаточно обычной смешанной пищи, содержащей необходимые вещества в умеренном, но достаточном количестве.

 

           МЕТОДИКА ВЗЯТИЯ  МАТЕРИАЛА.

           Сбор кала для исследования  осуществляет сам  пациент в соответствии с инструкцией. Посуда для сбора кала должна быть чистой, сухой, без примесей воды и  дезинфицирующих средств; следует избегать примеси к испражнениям мочи, выделений из половых органов и других  веществ, в том числе  лекарств. Желательно  иметь  стеклянную широкогорлую  посуду, не следует использовать флаконы с  узким горлом, спичечные коробки, бумагу. Кал для исследования  забирают из разных мест разовой  порции, общее количество – 10-15г.

            УСЛОВИЯ ДОСТАВКИ И ХРАНЕНИЯ.

              Кал для исследования доставляется в лабораторию утром. Желательно, чтобы с момента дефекации до исследования прошло не более  12 часов.  Хранить необходимо до исследования в холодильнике при температуре  3-5с.

 

ОСОБЕННОСТИ   СОБИРАНИЯ И  УСЛОВИЙ ХРАНЕНИЯ КАЛА  ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ  ОТДЕЛЬНЫХ  ПОКАЗАТЕЛЕЙ.

 

                ОБНАРУЖЕНИЕ  КРОВИ: при исследовании кала с целью обнаружения скрытого кровотечения за 3 дня  до анализа следует  исключить из диеты мясо,  рыбу, зелёные овощи, помидоры, а также лекарства,  содержащие металлы (железо, медь).

 

                 ОПРЕДЕЛЕНИЕ СТЕРКОБИЛИНОГЕНА: кал обязательно должен быть свежевыделенным  (исследуют не позднее 2 часа  после дефекации),  собран и доставлен в посуде тёмного стекла, необходимо защищать от действия  света.

 

ОБНАРУЖЕНИЕ ПРОСТЕЙШИХ: (ВЕГЕТАТИВНЫХ   ФОРМ).

Кал  должен  быть  обязательно  свежевыделенным – исследование  необходимо проводить не  позднее  15-20 минут после  дефекации, т.е. ещё  в тёплом  состоянии; в остывшем  кале вегетативные  формы  простейших  быстро теряют подвижность и  погибают. Цисты  сохраняются  значительно  дольше, поэтому  обнаружение цист   можно проводить даже через несколько  часов при  условии  сохранения  кала в холодильнике, но не более  24 часов.

 

                     ОБНАРУЖЕНИЕ  ГЕЛЬМИНТОВ: для диагностики  гельминтозов  исследуют, кроме  испражнений, соскобы с  перианальных  складок, дуоденальное   содержимое, мочу, содержимое  подногтевых пространств,  мокроту, ректальную  слизь и  т.д.    Для   контроля за  лечением  направляют  все  порции  фекалий, выделенные в  дни приёма  антигельминтных  средств, в лабораторию  доставляются  также и  выделенные с  испражнениями  паразиты.

Соскоб с  перианальных  складок  делают с  помощью  деревянного шпателя, смоченного  в  50%  растворе  глицерина   или  1%  растворе  соды.

        Производят осторожное  легкое соскабливание по  всей  окружности  анального отверстия  с  поверхности  перианальных  складок, соскоб  проводят  утром  до дефекации, у  женщин – и до  мочеиспускания. Полученный материал  снимают со шпателя  краем покровного  стекла и  помещают  в  каплю  50% глицерина  на предметном  стекле, покрывают  этим же стеклом  и  микроскопируют.

         Если соскоб  производят не в  лаборатории, для удобства  транспортировки  можно использовать коробки и  пузырьки  от  пенициллина:  шпатель  после соскабливания  опускают в  пенициллиновый  пузырёк  с  2-3 каплями  50% раствора глицерина  и  ставят пузырёк  в  ячейку   коробки.

           Соскоб с  перианальных  складок в  амбулаторных условиях  может  проводить  и  сам   больной; для этого используют  ватный тампон  в  пробирке  (для взятия  слизи  из  зева); в  пробирку приливают   5 мл  кипячёной воды, больной  утром  до  вставания  с  постели  ватным  тампоном, слегка  отжатым  о   стенки  пробирки, обтирает  перианальные  складки  вокруг  ануса  и  вкладывает тампон  обратно в пробирку, доставляет пробирку с  тампоном в лабораторию.

КАТЕТЕРИЗАЦИЯ  ПЕРИФЕРИЧЕСКИХ   ВЕН.

 

           Катетеризация вен  давно  стала  рутинной  медицинской  процедурой. За  один  год в  мире   устанавливается  свыше  500  млн. периферических  венозных  (внутривенных) катетеров. В России  из-за  недостаточного  опыта  применения    периферических венозных  катетеров и ухода  за  ними, а  также  отсутствия  на  рынке  медицинского оборудования  периферических  катетеров  из  высококачественных   материалов   проводилась  необоснованно  широко  катетеризация  центральных   вен. Как показывает  современная  практика, в  большинстве  случаев  катетеризация  периферических  вен  более  целесообразна и  безопасна.

Внутривенная    терапия  с   использованием  периферического   венозного катетера  практически не  вызывает  осложнений  при  соблюдении  следующих  условий: метод   должен  применяться не  от случая к   случаю (стать постоянным и привычным  в   практике); следует  обеспечить безупречный    уход  за катетером. Периферический венозный  катетер вводится в периферическую вену и  обеспечивает доступ  в  кровяное  русло в следующих    ситуациях:

1.Введение  лекарственных  препаратов пациентам, которые не  могут  принимать  их   орально, либо когда необходимо  быстро  ввести  лекарство в  эффективной  концентрации (это  особенно  важно, если  препарат   может  изменить  свои  свойства  при  оральном  приёме.

2. Проведение частых  курсов внутривенной терапии  хроническим  больным.

3. Инвазивный мониторинг  кровяного давления.

4. Взятие  крови   для  серии  клинических  исследований, проводимых с  временными   интервалами, например, определение  толерантности к  глюкозе, содержания  лекарств (наркотиков) в плазме  крови.

5. Доступ в кровяное  русло при  неотложных  состояниях (быстрый венозный  доступ  при  необходимости  экстренного  вливания  лекарственных  средств или  достижения  большой  скорости  введения  растворов).

6. Переливание  препаратов крови.

7. Парентеральное  питание (кроме  введения  питательных смесей, содержащих  липиды).

8. Регидратация  организма.

Правильно выбранный   венозный   доступ  весьма  важен для   успешной  внутривенной  терапии. При  выборе места   катетеризации необходимо  учитывать предпочтение  пациента, простоту  доступа и  пригодность сосуда  для  катетеризации.

 

ВЫБОР ВЕНЫ ДЛЯ КАТЕТЕРИЗАЦИИ:

·        сначала  используют  дистальные  вены;

·        выбирают вены, мягкие и  эластичные на  ощупь;

·        предпочитают  крупные  вены, соответствующие длине катетера;

·        устанавливают  катетер  в  вену  не на  «рабочей» руке.

 

КАТЕТР НЕ СЛЕДУЕТ ВВОДИТЬ В :

*    жёсткие на  ощупь и  склерозированные вены (возможна   повреждена   их  внутренняя  оболочка);

·        вены сгибательных  поверхностей  суставов (высок  риск  механического повреждения)

·        вены, расположенные близко к  артериям или  их  проекциям  (велик риск  прокола);

·        вены  нижних  конечностей;

·        ранее катетеризированные  вены (возможно повреждение внутренней  стенки  сосуда);

·        вены  конечностей  с  переломами (возможно  повреждение вен);

·        небольшие видимые, но непальпируемые вены (неизвестно их состояние);

·        вены  ладонной  поверхности  рук (есть  опасность их  повреждения);

·        срединные  локтевые вены (обычно  они  используются для   взятия  крови   на  исследование)

·        вены на  конечности, которая  подверглась  хирургическому   вмешательству или химиотерапии.

Наиболее часто  катетеризируются латеральные и  медиальные подкожные вены  руки, промежуточные вены локтя  и  промежуточные вены  предплечья. Иногда при  невозможности их  катетеризации  используются  пястные и  пальцевые вены.

ПРИ ВЫБОРЕ КАТЕТЕРА УЧИТЫВАЮТ:

·        диаметр  вены;

·        необходимую  скорость  введения  раствора;

·        потенциальную    продолжительность  функционирования  катетера  в  вене;

·        свойство  вводимого  раствора.

Главное взять  наименьший  катетер, обеспечивающий  необходимую скорость введения  раствора в самой  крупной из доступных  периферических  вен.

Существенное значение  имеет то,  из какого  материала  катетер  изготовлен. Отечественные катетеры в основном – полиэтиленовые. Это самый простой в обработке материал, однако  он  обладает  повышенной  тромбогенностью, вызывает раздражение  внутренней  оболочки  сосудов, из-за своей  жёсткости  способен  их  перфорировать. Предпочтительны  тефлоновые и  полиуретановые катетеры. При их  применении  значительно меньше  осложнений; если  обеспечить  за ними  качественный  уход, срок их  эксплуатации  намного больше, чем полиэтиленовых. Это даёт  выраженный  экономический  эффект, несмотря на  относительно  высокую  стоимость этих  катетеров.

Наиболее частые причины  неудач и  осложнений при  катетеризации периферических  вен – отсутствие практических  навыков у персонала, нарушение  методики постановки  венозного катетера и  ухода за  ним, что в  России во  многом  объясняется  отсутствием  стандартов.

АЛГОРИТМ   ПОСТАНОВКИ ПЕРИФЕРИЧЕСКОГО  ВЕНОЗНОГО  КАТЕТЕРА.

 

1.      Вымойте  руки.

2.      Соберите  стандартный набор для  катетеризации  вены, в  который  входят: стерильный лоток,  лоток для  мусора, шприц  с  10 мл  гепаринизированного раствора (1:100), стерильные ватные шарики  и  салфетки, лейкопластырь или клеящая  повязка, кожный антисептик,  периферические внутривенные катетеры нескольких размеров, переходник или соединительная  трубка или обтуратор, жгут, стерильные   перчатки, ножницы, лангета, бинт средней ширины, 3% раствор перекиси водорода.

3.      Проверьте целостность упаковки и  сроки хранения  оборудования.

4.      Убедитесь, что перед вами  больной, которому  назначена катетеризация вены.

5.      Обеспечьте хорошее освещение, помогите пациенту принять  удобное  положение.

6.      Разъясните пациенту суть предстоящей  процедуры, создайте атмосферу доверия, предоставьте ему возможность задать  вопросы, определите предпочтения  пациента  в отношения  места  постановки  катетера.

7.      Приготовьте контейнер для  утилизации острых  предметов.

8.      Тщательно вымойте руки и  просушите их.

9.      Выберите место предполагаемой    катетеризации  вены:

* наложите жгут   на  10-15см выше предполагаемой зоны  катетеризации;

·        попросите пациента  сжимать и разжимать пальцы кисти руки для  улучшения  наполнения  вен кровью;

·        выберите вену путём  пальпации, принимая во внимание характеристики инфузата;

·        снимите жгут.

10.  Подберите  наименьший катетер, учитывая размер вены, необходимую скорость введения, график проведения  внутривенной терапии, вязкость инфузата.

11.  Обработайте руки  антисептиком и наденьте  перчатки.

12.  Наложите жгут на 10-15см  выше выбранной   зоны.

13.  За  30-60 с обработайте место катетеризации кожным антисептиком, дайте ему высохнуть. НЕ КАСАЙТЕСЬ ОБРАБОТАННОЙ ЗОНЫ!

14.  Зафиксируйте вену, прижав её пальцем ниже  предполагаемого места  введения  катетера.

15.  Возьмите катетер выбранного диаметра и  снимите защитный чехол. Если  на чехле  расположена дополнительная заглушка, чехол  не  выбрасывайте, а держите его между пальцами свободной руки.

16.  Введите катетер на игле под  углом  15 ° к коже,  наблюдая за появлением крови в  индикаторной  камере.

17.  При появлении крови в  индикаторной камере  уменьшите  угол наклона  иглы-стилета и  на несколько миллиметров введите иглу в вену.

18.  Зафиксируйте иглу-стилет, а канюлю медленно до  конца сдвиигайте с  иглы в  вену (игла-стилет полностью из катетера пока не удаляется).

19.  Снимите жгут. Не допускайте введения иглы-стилета в катетер  после смещения его в вену!

20.  Пережмите  вену для снижения кровотечения и окончательно удалите иглу  из катетера, утилизируйте иглу с  учётом  правил  безопасности.

21.  Снимите заглушку с защитного чехла   и закройте катетер или присоедините инфузионную систему.

22.  Зафиксируйте  катетер   с  помощью  фиксирующей  повязки.

23.  Зарегистрируйте процедуру катетеризации вены  согласно требованиям  лечебного  учреждения.

24.  Утилизируйте отходы в  соответствии с правилами  техники  безопасности и  санитарно-эпидемиологического  режима.

ЕЖЕДНЕВНЫЙ УХОД ЗА  КАТЕТЕРОМ.

 

       Необходимо помнить, что максимум  внимания к выбору  катетера, процессу его постановки и качественный уход за  ним  являются главными  условиями  успешности  лечения и   профилактики  осложнений. Чётко  соблюдайте правила  эксплуатации  катетера. Время , потраченное на  тщательную подготовку, никогда не  бывает  потерянным!

         Каждое  соединение катетера – это ворота для  проникновения  инфекции. Прикасайтесь  к  катетеру  как  можно  реже,  строго  соблюдайте  правила  асептики, работайте только в  стерильных  перчатках.

          Чаще меняйте стерильные заглушки, никогда не  пользуйтесь  заглушками, внутренняя  поверхность которых  могла  быть  инфицирована.

            Сразу  после введения  антибиотиков, концентрированных  растворов  глюкозы, препаратов крови  промывайте  его  небольшим  количеством    физиологического  раствора.

             Для профилактики   тромбоза и  продления  функционирования  катетера в  вене  дополнительно  промывайте  его  физиологическим  раствором  днём между  инфузиями. После введения физиологического раствора  не  забудьте ввести  гепаринированный  раствор (готовится в  соотношении  часть  гепарина  на  100 частей  физиологического  раствора).

 Следите за  состоянием  фиксирующей  повязки, при  необходимости  меняйте её.

Регулярно  осматривайте место пункции с  целью раннего выявления  осложнений.

 Сообщайте  врачу о  появлении отёка, покраснении, местном  повышении  температуры, непроходимости  катетера, подтекании, болезненных   ощущениях  во  время   введения  препаратов и   удалите  катетер.

При смене лейкопластырной  повязки  запрещается  пользоваться  ножницами,  так как при этом  можно  отрезать  катетер, и  он  попадёт в  кровеносную систему.

 Для  профилактики  тромбофлебита  на вену  выше места пункции  тонким слоем накладывайте  тромболитические мази (гепариновую, троксевазин).

Если  ваш  пациент  маленький  ребёнок, следите, чтобы он   не  снял повязку и  не  повредил  катетер.

 

     При появлении побочных  реакций  на  препарат (бледность, тошнота, сыпь, затруднение дыхания, подъём температуры  тела)  вызовите  врача.

       Информацию об объёме введённых  за  сутки препаратов, скорости их введения  регулярно фиксируйте в  карте  наблюдения  за пациентом, чтобы  контролировать эффективность инфузионной     терапии.

 Место катетеризации   рекомендуется  менять каждые  48-72 часа.

АЛГОРИТМ  УДАЛЕНИЯ ВЕНОЗНОГО  КАТЕТЕРА.

 

1.      Соберите  стандартный  набор для  удаления  катетера  из вены:

·        стерильные перчатки;

·        стерильные  марлевые  шарики;

·        лейкопластырь;

·        ножницы;

·        тромболитическая мазь;

·        кожный антисептик;

·        лоток для  мусора;

·        стерильные пробирка, ножницы и  лоток (используются, если  катетер затромбирован  или при  подозрении на   его инфицирование).

2.      Вымойте руки.

3.      Прекратите инфузию, снимите защитную бинтовую  повязку.

4.      Обработайте руки  антисептиком, наденьте перчатки.

5.      Двигаясь от периферии к  центру, удалите без ножниц  фиксирующую повязку.

6.      Медленно и  осторожно выведите катетер из вены.

7.      Осторожно на  2-3 мин. прижмите место катетеризации  стерильным    марлевым тампоном.

8.      Обработайте место катетеризации кожным   антисептиком.

9.      Наложите на место  катетеризации  стерильную давящую повязку и  зафиксируйте  её   лейкопластырем.

10.  Проверьте целостность канюли  катетера. При наличии тромба или подозрении на  инфицирование катетера кончик канюли  отрежьте стерильными ножницами, поместите  в стерильную пробирку и  направьте  в бактериологическую лабораторию на исследование (по назначению  врача).

11.  Отметьте в документации время, дату и  причину    удаления катетера.

12.  Утилизируйте  отходы в соответствии с  правилами  техники безопасности и  санитарно-эпидемиологического режима.

 

Несмотря на то, что катетеризация периферических  вен значительно  менее опасна, чем  катетеризация  центральных вен, она чревата осложнениями, как и любая процедура, нарушающая целостность  кожного покрова. Однако большинства  осложнений можно  избежать, если медсестра хорошо владеет манипуляционной  техникой, строго соблюдаются правила асептики и  антисептики, за  катетером  установлен правильный уход. 

 

 

ТЕХНОЛОГИЯ  ВВЕДЕНИЯ  ЦИТОСТАТИКОВ И  ПРАВИЛА  ТЕХНИКИ  БЕЗОПАСНОСТИ   МЕДИЦИНСКИХ  СЕСТЁР  ПРИ  РАБОТЕ  С  НИМИ.

1.      Для  работы  с  цитостатиками  (если  есть такая  возможность) желательно  выделение  отдельного помещения  и  наличие  вытяжного шкафа  с  вертикальным током  воздуха. Горизонтальный  ток  воздуха  (т.е. проветривание)  не  рекомендуется,  т.к.  воздух  из  ампулы  в  таком  случае  выбрасывается  на  открывающего. Если устройство  вытяжного шкафа  невозможно, то  необходимо пользоваться вместо этого  эффективным  респиратором. Хирургические  марлевые повязки  не предотвращают  вдыхание  аэрозоли.  Еда, питьё, курение, приготовление  пищи  в  указанном  помещении и  поблизости  от  него  запрещены.

2.      Рабочие  плоскости в  процедурном  кабинете  должны быть  покрыты  пластиковыми  моющимися  покрытиями  или  адсорбирующей  бумагой. Пролитые капли  цитостатиков тут же вытираются, если  покрытие  бумажное, оно тут  же выбрасывается  и  заменяется  новым.

3.      В работе с цитостатиками  должны использоваться  хирургические  перчатки, сделанные из каучука, а  не поливинилхлорида, т.к. последние впитывают в  себя  цитостатики.  Перчатки должны  меняться  через  1 час  работы, порванные перчатки  использовать   ЗАПРЕЩЕНО!

4.      Ампулы должны  открываться  в сторону  от  лица   медсестры  через  стерильную  марлевую  салфетку, чтобы снизить  до  минимума   выброс  аэрозолей  из  ампулы.

5.      При  разведении цитостатиков  жидкость  во  флакон должна  вливаться  медленно, струя должна быть  направлена  на стенку   флакона.

6.      Если игла вставлена  во  флакон с  цитостатикамии, она должна  быть накрыта стерильной  салфеткой, чтобы  свести  испарение  лекарств до  минимума.

7.      Игла шприца также  должна быть накрыта  стерильной  салфеткой.

8.      После разведения цитостатика, перед инъекцией, игла должна быть  сменена.

9.      Поверхность  ампул, флаконов и  всех ёмкостей, применяемых  в  химиотерапии, должна быть  прозрачной, маркированной и  датированной.

10.  Все использованные шприцы, ампулы, флаконы, салфетки и пробирки  должны  выбрасываться в баки  с  подогнанными   крышками  для  предотвращения  испарения  цитостатиков.

11.  Персонал, работающий с  пациентами, получившими  химиотерапию в  течение последних  2 суток, должен работать с ними  в  перчатках.

12.  Руки после  контакта с  цитостатиками и  пациентами, получавшими химиотерапию, необходимо тщательно  мыть.

.

 

 

 

ОСЛОЖНЕНИЯ  ПРИ  ВВЕДЕНИИ  ЦИТОСТАТИКОВ.

При  попадании  под  кожу цитостатиков, предназначенных  только  для  внутривенного  введения, необходимо:

-         прекратить  введение  препарата,  не вынимая иглы  из  вены, попытаться  отсосать  введённое  лекарственное  средство;

-         через  эту же  иглу  вводится  антидот;

            

             а) для адриабластина и  митомицина   с – 8,  4% - 5, 0  бикарбоната  натрия  вводится  лидаза   64-128 ед.,

             б) для  эмбихина  (кардиолизина) – тиосульфат  натрия   2,9% - 5,0 мл.

 

               После введения антидота   игла  удаляется.

               В область  подкожного  попадания цитостатика несколько раз  в день втирается стероидная мазь и ставятся компрессы;

               При попадании винкристина – тёплые компрессы;

               При всех остальных цитостатиках – холодные  компрессы.

КОМПОНЕНТЫ  КРОВИ.                        

1. ГЛОБУЛЯРНАЯ ЧАСТЬ                                                                      2. ПЛАЗМА

 

 

                                              ЛЕЙКОМАССА                                

                                                                                                      - НАТИВНАЯ

ЭРИТРОМАССА                                                                        - СЗП (СВЕЖЕЗАМОРОЖЕНАЯ)   

ЭРИТРОВЗВЕСЬ        ТРОМБОМАССА                                 - СУХАЯ

                                                                                                      -АСП

 ОТМЫТЫЕ                              ТРОМБОЛЕЙКОМАССА      (АНТИСТАФИЛОКОККОВАЯ)

ЭРИТРОЦИТЫ                                                                           - АНТИКОЛИПЛАЗМА  

                                                                                                      - ПЛАЗМА  ОЖОГОВОГО

ЗАМОРОЖЕННЫЕ ЭРИТРОЦИТЫ                                          РЕКОНВАЛИСЦЕНТА

                                                                                                      - КРИПОПРЕЦИПИТАТ

ЭМОЛТ  (ЭРИТРОМАССА. ОБЕДЕННАЯ  Л и  Т )             - ПНК (НАТИВНАЯ

                                                                                                         КОНЦЕРТРИРОВАННАЯ)

 

 

 

 

 

 

 

ПРЕПАРАТЫ  КРОВИ

 

НАТИВНЫЕ  ФРАКЦИИ  КРОВИ, КОТОРЫЕ  ПОДВЕРГАЮТСЯ  КОНСЕРВИРОВАНИЮ

 

1.      ПРЕПАРАТЫ  КРОВИ  ПЛАЗМОЗАМЕЩАЮЩЕГО (КОМПЛЕКСНОГО)  ДЕЙСТВИЯ:

 

 

                             1. АЛЬБУМИН                                                2. ПРОТЕИН

                       

 

2.      ПРЕПАРАТЫ  КРОВИ  ГЕМОСТАТИЧЕСКОГО  ДЕЙСТВИЯ:

 

 

 

           1.ДЛЯ  ВНУТРИВЕННОГО  ВВЕДЕНИЯ                       2. МЕСТНОГО  ПРИМЕНЕНИЯ  

            

              а) криопреципитат                                                  а) гемостатическая  губка

            б) протромбин—проконвертин                            б) биологический  антисептический 

             фактор стюарт- фактор в                                         тампон  (БАТ)

            в)фибриноген                                                                     в) гемосепт  

                                                                                                                 г) тромбит

 

 

 

3.ПРЕПАРАТЫ  КРОВИ  СТИМУЛИРУЮЩЕГО  ДЕЙСТВИЯ:

1.ФИБРИННАЯ  ПЛЁНКА                                      2. ГЛЮНАТ  (СЫВОРОТКА  ФИЛАТОВА)

 

 

3.      ПРЕПАРАТЫ  КРОВИ  ИММУНОЛОГИЧЕСКОГО  ДЕЙСТТВИЯ:

 

1. ИММУНОГЛОБУЛИН  ДОНОРСКИЙ
2. ИММУНОГЛОБУЛИН  АНТИСТАФИЛОКОККОВЫЙ
3. ИММУНОГЛОБУЛИН  АНТИГАНГРЕНОЗНЫЙ
4. ИММУНОГЛОБУЛИН   ПРОТИВ  КЛЕЩЕВОГО  ЭНЦЕФАЛИТА

      

 

5. ПРЕПАРАТЫ  КРОВИ  ФИБРИНОЛИТИЧЕСКОГО  ДЕЙСТВИЯ:

 

 

1.      ФИБРИНОЛИЗИН

 

 

 

 

 

КЛАССИФИКАЦИЯ   КРОВОЗАМЕНИТЕЛЕЙ  (ГЕМОКОРРЕКТОРОВ)

 

1.      Гемодинамические  на  основе:

 

 

1. Декстрана           2. Оксиэтилкрахмала        3. Желатина

а)   полиглюкин       а) оксимал                           а) желатиноль

б) реополиглюкин    б)волекам                            б) гемофузин

                                   в)полиоксидин

 

 

 

 

2.      Дезинтоксикационные

   

1.гемодез                                   3.неогемодез

                        2.полидез    

 

 

 

3.      Растворы для парентерального  питания

 

1. белковые гидролизаты                                    3. жировые эмульсии      

а) аминокровин                                                      а) инфузолипол

                                          б) гидролизат казеина                                            б) липофундин 

                                          в) гидролизин                                                          в) интралипид                                            

                                                 2.смесь аминокислот

                                                                 

                                                а) амин

                                                б) полиамин

                                                в) фреамин

                                                г) альвезин

 

Переливаются со скоростью  не  более  25-30 капель в минуту  в/ венно.

4. Регуляторы   водно-солевого  и  кислотно-щелочного  равновесия:

 

 

1.      хлосоль                         1.манитол                        1. раствор рингера   

2.      дисоль                           2. сорбитол                     2. лактосол                   

3.      трисоль                                                                   3. мафусол

 

 

5. Переносчики кислорода

 

1.      перфторан

 

6. Комплексного  действия: 

 

 

1. реоглюман                                  3. реоглюсоль

                            2. полифер

 

 

 

 

 

 

ПРОФИЛАКТИКА  ГЕМОТРАНСФУЗИОННЫХ  ОСЛОЖНЕНИЙ.

           Основными причинами гемотрансфузионных  осложнений  являются:

            -    несовместимость крови донора и  деципиента   по  эритроцитам;

-         недоброкачественность переливаемой  крови;

-         погрешности в  методике  трансфузии;

-         массивные дозы  трансфузии;

-         недоучёт  противопоказаний  к  трансфузии;

-         перенос возбудителей инфекционных  болезней.

Чтобы не допустить переливания не  совместимой  крови и  следующих за этим клинических проявлений  несовместимости, специалист, переливающий кровь, обязан:

-         правильно выбрать  кровь по группам крови системы  «АВО»;

-         правильно  выбрать кровь  по резус-принадлежности;

-         проверить всю  относящуюся к  этому документацию;

-         произвести пробы на совместимость.

Непосредственно  перед трансфузией  крови или её компонентов необходимо определить их пригодность к переливанию. Специалист выбрав тот или иной компонент, обязан  убедиться в правильности  паспортизации  контейнера (флакона). Ёмкости  должны иметь этикетку (паспорт), на которой указаны  номера, дата заготовки, группа крови, резус-принадлежность, наименование  гемоконсерванта, фамилия,  имя, отчество донора, наименование учреждения изготовителя и  подпись  врача, выпустившего  кровь или  её компонент для использования, срок годности. Обязательно должен присутствовать штамп: «ВИЧ  ОТРИЦАТЕЛЬНЫЙ»,  «АНТИТЕЛА К ГЕПАТИТАМ  В, С  НЕ  ОБНАРУЖЕНЫ».

Выбрав кровь для переливания больному, специалист обязан:

-         сравнить запись группы крови  реципента в истории  болезни и донора (на контейнере с кровью, приготовленой для переливания), убедиться, что кровь донора и  реципиента  совместимы по системе АВО.

-         Проверить запись о резус-принадлежности в  истории болезни  реципиента  и  на контейнере с кровью, убедиться, что кровь  донора и реципиента совподает по резус-принадлежности.

                НЕЗАВИСИМО ОТ  ИМЕЮЩИХСЯ ЗАПИСЕЙ  НЕПОСРЕДСТВЕННО ПЕРЕД       ПЕРЕЛИВАНИЕМ  СПЕЦИАЛИСТ  ОБЯЗАН:

-         определить группу крови больного и  сверить результат с записью в истории болезни и на контейнере с кровью;

-         определить группу крови донора из трубочки контейнера и  сверить с записью на контейнере;

-         произвести пробу на совместимость по группам  крови  «АВО»;

-         произвести пробу на совместимость по резус-антигену «Д»;

-                     переливание крови начать с биологической пробы.

Для этого сначала струйно, в течении 20-30  секунд  переливают  10-15 мл крови (эритромассы, плазмы). Трансфузию останавливают и наблюдают за состоянием больного в течение 3-х  минут. При отсутствии явлений несовместимости  вновь переливают  10-15 мл крови, снова останавливают трансфузию и  наблюдают за больным в течение  3-х  минут.

Такую процедуру проводят три раза. При отсутствии специфической реакции  после троекратной  проверки  переливают всю назначенную  дозу.  Если же у больного возникают неприятные ощущения в поясничной  области, возбуждение, учащение пульса, дыхания,  появление одышки и  затруднённого дыхания, то переливание крови  прекращают.

При переливании крови  больному  во время общего обезболивания для оценки биологической пробы учитываются объективные показатели: частота и наполнение пульса, артериальное давление, окраска кожных  покровов и  др.

 Осложнения    при  переливании  крови  могут  возникать вследствие  ошибок и технических  погрешностей, могут  быть  обусловлены свойствами  переливаемой  крови, а  также  иммунологической  несовместимостью крови донора  и  реципиента. Ошибки могут быть обусловлены также  небрежным  ведением  документации, невыполнением  инструкций, неправильной оценкой реакции  агглютинации.

 

Подавляющее  число  осложнений обусловлено  не  погрешностями при  заготовке  крови и  ошибками работников  службы крови, а  недочётами  при хранении и  переливании крови  в  лечебных учреждениях. Необходимо внимательно оценивать качество предназначенной  для переливания  крови  или  её  компонента. При наличии гемолиза, грубой  мути и  сгустков  кровь должна  быть  забракована.

Пробы на совместимость по группам крови  «АВО» и  резус-антигену  «Д» проводится отдельно и  не могут   заменить друг друга, так  как  выявление антител  разного характера  проводится разными  методами.

Для проб  на  совместимость  используют  сыворотку  крови  реципиента  и консервированную  кровь  или  эритроцитарную  массу  донора. Если кровь больному переливается из нескольких контейнеров, пробы на совместимость должны быть сделаны с кровью из  каждого контейнера, даже если  на них обозначено, что кровь получена от одного  и  того же  донора.

Сыворотка больного должна быть  свежей, полученной  в  тот же  день, когда делается переливание  крови, или накануне  при условии  хранения  её  при  температуре  4 – 8с.

Для получения  сыворотки  у  больного в пробирку  без  стабилизатора  берут  4 – 5мл  крови. На пробирке надписывают фамилию  и  инициалы  реципиента,  группу его  крови и  дату. Через  1-2 минуты  пробирку  с кровью  сильно  встряхивают  для  отделения свёртка от  стенок  пробирки  или  обводят  его  сухой стеклянной   палочкой. Если необходимо  ускорить  отделение сыворотки, пробирку с кровью  центрифугируют  около  5  минут  со скоростью  2000-3000 об/мин.

При проведении пробы  на   совместимость  по группам  на белую  плоскость  наносят 2-3 капли  сыворотки реципиента и  в  5 раз  меньше  крови донора. Капли перемешивают и  наблюдают за  реакцией  в  течении  5 минут, периодически  покачивая  плоскость. Отсутствие агглютинации  эритроцитов говорит о   совместимости  крови донора и  реципиента  по  группам  системы    «АВО». Появление  агглютинации  указывает на   их  несовместимость  и  на  недопустимость  переливания  данной  крови  или  её  компонентов.

Пробу на  совместимость по  резус-фактору --      о(Д) – проводят  пробирочно-желатиновым  методом. В пробирку раскапывают  2 капли  сыворотки  больного, 2 капли желатины  и  1 каплю крови  донора. Смешивают встряхиванием  и  подогревают  на  водяной  бане  при  температуре  46-48с в  течение 10 минут. По прошествии   10  минут в пробирку  добавляют  5-7мл  физ.раствора, перемешивают  опрокидыванием  пробирки, наблюдают  за  окрашиванием. При  совместимости   по   резус-фактору  жидкость в  пробирке  имеет   перламутровый, слегка опалесцирующий  цвет, гомогенно   окрашена. Обязателен  контроль под  микроскопом. Если  кровь несовместима  по  резус-фактору, наблюдается  агглютинация  в   виде   склеивающихся  комочков на  фоне   просветляющейся  сыворотки. Переливание такой  крови  недопустимо.

Следует  иметь  в  виду, что очень  ценная биологическая  проба  может  ввести  в заблуждение, если произведена  неверно.  Недопустимо  при  биологической пробе  вводить  кровь  медленно и  тем  более  капельно. Во время  пробы  необходимо  следить  за  лицом больного, поддерживать  с  ним контакт. Чем  раньше  будет  распознана  несовместимость при  переливании  крови  и  чем  раньше в этой  ситуации  оно будет прекращено, тем  меньше  пострадает  больной.

Перед началом  трансфузии  необходимо проследить, полностью ли  удалён весь  воздух  из  системы  переливания. При закупорке  иглы в вене  сгустком  никогда  нельзя  под  давлением  проталкивать его  в  вену. Необходимо  извлечь  иглу  из  вены, взять  другую  иглу и  пунктировать  другую  вену. Медленное, капельное  переливание  крови   предупреждает  перегрузку  сердца и  способствует  лучшему  усвоению  больным  вливаемых  компонентов.

 

Используйте для  трансфузий системы  только однократного  применения и  никогда не переливайте  кровь из одного контейнера или  одной системой  нескольким  больным. Всегда  соблюдайте  необходимую  асептику. Не производите трансфузию  в  перевязочной, в которой  до этого делались  гнойные перевязки.

После окончания переливания  установите внимательное наблюдение за  больным. В случае каких-либо реактивных  состояний  медсестра  должна  обязательно  вызвать врача.

После трансфузии контейнер (флакон), из которого  производилось переливание, помещают в холодильник и  сохраняют  в  течение  48 часов.

 

 

 

СТЕРЕЛИЗАЦИЯ РАСТВОРАМИ  ХИМИЧЕСКИХ  СРЕДСТВ.

Стерилизация изделий  растворами  химических  средств  является вспомогательным методом, поскольку  изделия  нельзя  простерилизовать в  упаковке, а  по окончании  стерилизации  их  необходимо промыть в стерильной  воде  или  0,9% растворе  натрия  хлорида,   что  при  нарушении правил  асептики  может привести  к   вторичному обсеменению простерилизованных  изделий  микроорганизмами.

Данный метод  применяется для  стерилизации  изделий, в  конструкцию  которых входят  термолабильные  материалы, когда особенности  материалов изделий  не  позволяют  использовать другие  официально  рекомендуемые  методы  стерилизации.  Необходим  хороший    доступ  стерилизующего средства  промывной  жидкости ко  всем  стерилизуемым  поверхностям  изделий.

 Для  стерилизации  используют  средства, указанные в МУ  287-113, а  также   разрешённые  к  применению в  установленном   порядке   в  РФ.

 Ёмкости , используемые для стерилизации  и  отмыва   «стериллянта»  предварительно  стерилизуют  паровым методом в  2-х  слойных  мешках  при  температуре  132с  в  течение 20 минут.  Аналогично  стерилизуют  воду  для отмыва в  стеклянных  ёмкостях. Ёмкости для  стерилизации  используют  из  стекла, металлов, покрытых эмалью, термостойких  пластмасс. Ёмкости   д.б.с  крышками.

Стерилизацию проводят  при полном  погружении  изделий   в  раствор, свободно их  раскладывая. При  большой длине  изделия его  укладывают  по спирали. Разъёмные   изделия  стерилизуют в  разобранном  виде. Каналы и  полости заполняют  раствором, используя  стерильный  шприц с  насадкой.  Во избежание  разбавления  рабочих  растворов  погружаемые  изделия   д.б. сухими. Раствор  для  стерилизации  используется  однократно. После  стерилизации  изделия  извлекают  из  раствора  стерильным  пинцетом (корцангом), удаляют  раствор  из  каналов  и  полостей  стерильным  шприцем, промывают в стерильной жидкости, налитой в  стерильные  ёмкости, учитывая  рекомендации  по  применению  средства.

Все  манипуляции в процессе  стерилизации  и  отмыва  проводят при  соблюдении   правил  асептики  в  помещении, отвечающем   требованиям, предъявляемым  к  операционной  (пр. 720  МЗ  СССР),  в  стерильных  перчатках.

 Промытые стерильные  изделия  после удаления  остатков  жидкости  из  каналов  и  полостей с помощью стерильных  пинцетов выкладывают  на «стерильный стол» и  используют  немедленно, или помещают в  стерильную  коробку, выложенную стерильной  простынёй, на срок  не  более  3 суток.

РЕЖИМЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ.

Перекись  t  18с       6%  360мин. (+ -5). Изделия из полимерных материалов,

Водорода t  50с(+ -2) 6% 180мин. (+-5) стекла, корроз/ стойких  металлов.

Дезоксон –1 t не менее  1%  45мин. (+5)            То же.

Дезоксон—4  t 18с   -  =  -                -  =  -             То же.

Первомур t не менее 18с  4,8%  15мин. (+5)  Лигатурный шовный материал.

Бианол    t 21с (+-1)  20%  600мин. (+5) Изделия из полимерных  маттериалов,

                                                                   стекла, металлов, эндоскопы и инструменты

                                                                     к  ним.

Лизоформин 3000  t 40 с (+-1) 8% 60мин. (+5) То же. Температура поддерживается.

-   =  -                    t50 с (+-1)  8% 60  мин. (+5)  То  же.  ---    =   --- не поддерживается.

Колдспор t 21 с (+-1)  20%  540 мин (+5)            То  же.

Глутарал, t 21 с (+-1) применяют 240мин. (+5). Инструменты из металлов.

Глутарал – Н  без разведения  600мин. (+5). Изделия из полимерных материалов,

                                                                            стекла, металлов, эндоскопы и

                                                                            инструменты к  ним.

Сайдекс t 21 с(+-1)применяют 240мин. (+5). Инструменты из  металлов.

--  =  --               --  =  -- без разведения  600мин. (+5). Изделия из полимерных

                                                                                материалов, стекла, эндоскопы.

Стераниос  20% t 21 с (+-1) 2%  300мин. (+5). Эндоскопы, стекло, пластмасса,

                                                                                         Инструменты  из  металла простой

                                                                                конфигурации.  

--   =    --          --  =    --                 360мин.(+5). Инструменты  к эндоскопам, изделия

                                                                                из резины, металлов, стоматолог.

                                                                                   инструмент.

Дюльбак t20  с(+1) применяют  240мин (+5). Инструменты из металлов.

--      =     --     без разведения  360мин. (+5). Изделия из полимерных материалов,

                                                                           эндоскопы, инструменты к ним.

Гигасептфф   t21 с (+1)   10%     600мин.(+5). То  же.

Анолиты  t не менее 18с  0,002 – 0,5%  15-300мин. (+5). Изделия полимерных

                                                                               материалов, стекла, сплавов титана.

 

СТЕРИЛИЗАЦИЯ  ВОЗДУШНЫМ  МЕТОДОМ (сухой  горячий воздух)

 

При воздушном  методе стерилизации  стерилизующим  средством  является  сухой горячий воздух  температурой  160 и 180 с. Стерилизацию осуществляют  в  воздушных стерилизаторах.

     Воздушным методом  стерилизуют  хирургические, гинекологические, стоматологические  инструменты, детали  приборов и  аппаратов, в  том    числе  изготовленные из  коррозионностойких  металлов, шприцы с  пометкой  200 с, инъекционные иглы, изделия из силиконовой  резины.

       Перед  стерилизацией  воздушным  методом  изделия  после  предстерилизационной  очистки   обязательно высушивают  в  сушильном  шкафу  при  температуре  85 с до  исчезновения  видимой  влаги. Высушивание  металлических  изделий  проводят  немедленно  после извлечения  из  влажной  среды.

        Качество стерилизации воздушным  методом зависит  от  равномерности  распределения  горячего  воздуха в  стерилизационной  камере, что достигается  правильной  загрузкой  стерилизатора. Изделия загружают  в   таком  количестве, которое  допускает  свободную  подачу  воздуха  к  стерилизуемому  изделию.

n                                      Изделия необходимо  укладывать горизонтально поперёк  пазов  кассет, полок, равномерно  их  распределяя.

n                                      Недопустима  загрузка стерилизатора  навалом.

n                                      Не допускается перекрывать  продувочные окна и  решётку  вентиляции.

n                                      Большие  предметы  следует класть  на  верхнюю  металлическую  решётку, чтобы они  не  препятствовали  потоку  горячего  воздуха.

n                                      При загрузке  необходимо следить за тем, чтобы  стерилизуемые изделия  не  попали в зону  вращения  крыльчатки.

 Изделия  стерилизуют  завёрнутыми в  стерилизационные упаковочные  материалы. Шприцы стерилизуют  в  разобранном  виде. Во  время  стерилизации  металлических  инструментов  без  упаковки  их   располагают  так, чтобы они не  касались  друг  друга.

Загрузку и  выгрузку  изделий  проводят  при    температуре в  стерилизационной  камере  40-50  с . Отсчёт  времени  стерилизации следует производить с  момента  достижения  температуры  стерилизации  ( 180 или   160 с ), в зависимости  от  избранного  режима.

 Срок  сохранения стерильности  изделий, простерилизованных  в  бумаге  мешочной  влагопрочной, бумаге  упаковочной  высокопрочной,  бумаге крепированной – 20 суток. Кратность  использования  бумаги  мешочной  влагопрочной, бумаги  крепированной – 2  раза, бумаги  упаковочной  высокопрочной – 3 раза.

Конкретные виды зарубежных  упаковочных   материалов  однократного применения, рекомендованные  для  стерилизации  воздушным  методом, а также  сроки  хранения в  них   стерильности  изделий  указаны  в  методических документах  по  применению упаковок.

Изделия, простерилизованные без  упаковки,  помещают  на  «СТЕРИЛЬНЫЙ  СТОЛ»  и   используют в  течение одной  рабочей  смены.

В стерилизаторах,  стерилизующим  средством в котором является  среда  нагретых  стеклянных   шариков  (гласперленовые шариковые стерилизаторы),  стерилизуют изделия, применяемые в  стоматологии  (боры зубные, головки  алмазные, дрильборы, а  также  рабочие части  гладилок, экскаваторов, зондов и  др.).Изделия   стерилизуют в  неупакованном  виде по режимам, указанным в  инструкции по эксплуатации  конкретного  стерилизатора, разрешённого для применения. После  стерилизации  инструменты  используют  сразу по  назначению.

 

РЕЖИМ  СТЕРИЛИЗАЦИИ

        T180 С (+-2) – время выдержки   60 минут (+5)

         T 160 С (+-3) – время выдержки  150 минут (+5).

             Марки воздушных стерилизаторов: ШСС-80; ГП-20;  ГП-40;  ГП-80.

ВНИМАНИЕ! Время  стерилизационной  выдержки  сокращается у  стерилизаторов  нового поколения  (200 С – 30 мин.; 180С-45 мин.;  160 С-15мин.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ  ПАРОВЫМ  МЕТОДОМ

(водяной  насыщенный пар под  избыточным  давлением).

Паровым  методом  стерилизуют  общие  хирургические и  специальные  инструменты, детали приборов и  аппаратов из  коррозионностойких  металлов, стекла, шприцы с  пометкой  200С, хирургическое   бельё, перевязочный  и  шовный  материал, изделия  из  резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и   т.д.), патекса, отдельных  видов  пластмасс.

Для  упаковки  изделий  используют  стерилизационные  коробки  (биксы)  без  фильтров и  с  фильтром , а  также  упаковочные  материалы, разрешённые  к  промышленному  выпуску и  применению в РФ – двойная мягкая  упаковка  из бязи, пергамент, бумага мешочная  непропитанная, бумага  упаковочная  высокопрочная, бумага  крепированная, стерилизационные упаковочные  материалы  фирмы  «Випак  медикал»  (Финляндия) и    корпорации   «Рексем» (Великобритания).

Стерилизационные коробки  (биксы) не являются   упаковкой для  хранения  простерилизованных  изделий, но если эти  изделия  хранятся  в  коробках  в  течение времени. 

 Пакеты  из бумаги  и  пергамента  склеивают  10%  клеем   из  поливинилового спирта   или  5%  крахмального   клейстера.

 Хирургическое  бельё, перевязочный  материал  укладывают в стерилизационные коробки  параллельно   движению  пара в количестве, соответствующем  норме  загрузки.

  Резиновые перчатки  внутри и  снаружи пересыпают  тальком  для  предохранения   от  склеивания.  Между перчатками  прокладывают  марлю  или  бумагу.

Каждую  пару   перчаток  заворачивают  отдельно в  марлю или  бумагу  и в  таком  виде, не сгибая  их, помещают в  стерилизационную  коробку или  другую  упаковку. Резиновые  перчатки  стерилизуют при  температуре  120 С.

Паровым методом стерилизуют  лигатурный  шовный  материал: нити хирургические шёлковые  кручёные, нити  хирургические  капроновые кручёные, шнуры  хирургические  полиэфирные. Лигатурный шовный  материал   готовят к  стерилизации в  виде косичек, мотков, наматывая на  катушки, стеклянные  палочки и  т.д.  Подготовленный лигатурный  шовный  материал заворачивают  в  два  слоя   упаковочного материала (при  размещении в стерилизационной  коробке – в один  слой   упаковочного материала) в  количестве, расчитанном   на одну  операцию. На  упаковке   отмечают вид  шовного  материала и  его  номер.

Нити  хирургические капроновые кручёные стерилизуют  паром  только  при температуре  120-122 С, лигатурный  шовный   материал  других  перечисленных  видов  допускается  стерилизовать, кроме  того, при  температуре  130-134 С.

Лигатурный  шовный  материал  хранят  в  той же   упаковке, в  которой  он   был  простерилизован, в   специальных  шкафах  для  стерильных   изделий. Неиспользованный  стерильный лигатурный  шовный  материал  в  случае  нарушения  условий или  истечения срока  хранения  может  быть  повторно (ещё  лишь  один  раз) простерилизован  паровым  методом  при  температуре   120-122  С.

ПРИ  РАБОТЕ С  ПАРОВЫМ  СТЕРИЛИЗАТОРАМИ  СЛЕДУЕТ  ВЫПОЛНЯТЬ СЛЕДУЮЩИЕ  РЕКОМЕНДАЦИИ:

-              биксы  укладывать таким  образом, чтобы отверстия  в  них  располагались  перпендикулярно  направлению движения пара  в  камере;

-              к  задней  стенке стерилизатора  закладывать  большие биксы;

-              расстояние от бикса до  дверцы (крышки) стерилизатора должно быть не менее 15см, стерилизационная камера должна быть   заполнена на  2/3 для  свободного прохождения  пара;

-              бикс с текстильными  материалами, ватой размещают  вдали  от крана  подачи пара;

-              при выгрузки отверстия биксов закрывают пояском непосредственно в  камере стерилизатора;

-              биксы выгружают на стол, где до  остывания они должны быть закрыты стерильной простынёй;

-              расположение контрольных точек в  паровых  стерилизаторах.

 

НОРМЫ  ЗАГРУЗКИ СТЕРИЛИЗАЦИОННЫХ  КОРОБОК  ИЗДЕЛИЯМИ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ.

Стерилизуемый  объект.	Единица  измерения.	Тип  стерилизационной  коробки   КСК-3.КСК-6       КСК-9         КСК-12  КСК-18     КСПФ-12  КСПФ- КФ-3    КФ-6         КФ-9           КФ-12   КФ-18                            16.
Бинт	г	150	300	450	600	900	600	800
Вата	г	65	130	195	260	390	260	350
Полотенце	шт.	1	3	5	7	10	7	9
Халат	шт.	--	1	2	3	5	3	4
Простыня	шт.	--	1	2	3	5	3	4
Хирургические шапочки.	шт.	10	20	30	40	60	40	51
Хирургические перчатки	пара	--	--	45*	69*	90*	60*	80*
Трубки дренажные, катетеры, зонды.	кг	0,5	1,0	1,5	2,0	3,0	2,0	2,7

 

ПРИМЕЧАНИЕ:

*     1 пара  хирургических  перчаток  весит  20г; приведена норма  загрузки  для  паровых  стерилизаторов  с  вакуумными  способом  удаления  воздуха  из  стерилизационной  камеры, норма  загрузки   для паровых  стерилизаторов, не  имеющих  вакуумирования, должна  быть  снижена в  3 раза.

 

 

РАСПОЛОЖЕНИЕ  КОНТРОЛЬНЫХ  ТОЧЕК В  ПАРОВЫХ  СТЕРИЛИЗАТОРАХ.

 

Объём                                               стерилизационной камеры,  дм3	Число контрольных точек.	Расположение контрольных точек. Описание.	Схема.
До 100 включительно	5	Для стерилизаторов                   круглых                                                              вертикальных: т.1- верхней части камеры; т.2-- в нижней части камеры т.3-5-в центре стерилизационных коробок или внутри стерилизуемых упаковок размещённых на разных уровнях. Для стерилизаторов круглых горизонтальных: т.1- у загрузочной двери; т.2- у противоположной стенки; т. 3-5 в центре стерилизационных  коробок или внутри стерилизуемых упаковок.
Свыше 100 до 750 включительно.	11	Для стерилизаторов круглых горизонтальных и стерилизаторов прямоугольных: т.1- у загрузочной  двери, т.2- у противоположной стенки, т.3-11-в центре стерилизационных коробок или внутри стерилизуемых  упаковок.
Свыше 750	13	Для  стерилизаторов прямоугольных: т.1-у загрузочной двери, т.2-у противоположной стенки (разгрузочной двери); т.3-13-в центре стерилизационных коробок или внутри стерилизуемых упаковок размещённых на разных уровнях.

 

Примечание: контрольные точки 1 и 2  находятся в стерилизационной  камере вне стерилизуемых  изделий.

 

Расположение контрольных точек в  воздушных стерилизаторах.

 

Объём  стерилизационной камеры,   дм3	Число контрольных точек.	Расположение контрольных точек. Описание .	Схема
До 80 включительно	5	т.1- в центре стерилизационной камеры, т.3,4- в нижней части  стерилизационной камеры: справа (т.3) и слева (т.4) на одинаковом удалении от двери и задней стенки, т.2,5-в нижней части  камеры: справа (т.2) и слева (т.5) у двери.	11…
Свыше 80, однокамерные                         Свыше 80, двухкамерные	15                           30 (по 15 в каждой камере)	т.1-3- в центре стерилизационной камеры на трёх уровнях сверху вниз,  т.4-15-по углам на трёх уровнях (т.4-7-низ, т.8-11-середина, т.12-15-верх), размещая против часовой стрелки.         Аналогичным образом (как в однокамерных стерилизаторах) для каждой стерилизационной камеры.

 

 

Примечание: контрольные тесты помещают на  расстоянии не менее 5см  от стенок стерилизационной камеры.

 

Код формы по  ОКУД

Код учреждения по ОКПО.

 

Министерство здравоохранения  РФ		Медицинская документация. Форма №257/у
Название учреждения		Утверждена Минздравом СССР 04. 10. 80. №1030.

 

Журнал

работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава)

 

Начат                   199          г.                                                                    Окончен            199г               

 

 

Стерилизуемые изделия.

Упаковка.

Время стерилизации (в мин.)

Режим.

Тест—контроль.

Подпись.

Наименование.

Количес—тво

Нача-ло

Кон-ец

Давление

Тем-пература

Биолог.

Термич

Химичес

 

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ПАРОВЫМ МЕТОДОМ

 

(водяной пар  под  избыточным  давлением)

 

 

Давление пара в стерилизационной камере см2.		Температура стерилизации °С.		Время стерилизационной выдержки  мин.			Вид изделий, рекомендуемых к стерилизации  данным методом.	Вид упаковочного материала.
Номинальное значение.	Предельное отклонение.	Номинальное значение.	Предельное отклонение.	При ручном и полуавтомат управлении не мен.	При автоматическом управлении.
					Номиналь. значен.	Предельное отклонение.
1	2	3	4	5	6	7	8	9
0,21 (2,1)	+-0,01 +-(0,1)	134	+-1	5**	5**	+1	Изделия из коррозионностойких металлов, стекла, из текстильных материалов, резин.	Стерилизационная коробка с фильтром или без фильтра, двойная мягкая упаковка из бязи, пергаментная бумага  мешочная непропитанная бумага упаковочная высокопрочная, бумага крепированная стерилизационная упаковочные материалы фирмы «Випак Медикал»***.      Тт
0,20 (2,0)	+-0,02 (+-0,2)	132	+-2	20	20	+2	Изделия из коррозонностойких металлов, стекла, текстильных материалов, резины, лигатурный шовный материал.
0,14 (1,4)	+-0,01 (+-0,1)	126	+-1	10**	10**	+1	Изделия из коррозионностойких металлов, стекла, текстильных материалов, резины.
0,11 (1,1)	+0,02 (+0,2)	120	+2	45	45	+3	Изделия из резинового патекса, отдельных видов пластмасс (полиэтилен высокой плотности, ПВХ- пластикаты), лигатурный шовный материал.
0,11 (1,1)	+-0,01 (+-0,1)	121	+-1	20**	20**	+2
0,05 (0,5)	+0,02 (+0,2)	110	+2	180	180	+5

Примечание.

·        Время  стерилизационной  выдержки, соответствующее значению  t°С стерилизации с учётом предельных  отклонений  t° в загруженной стерилизационной камере, указано в  паспорте  на  конкретную модель  стерилизатора.

**   Приведено время  стерилизационной  выдержки, которое  рекомендовано  в паровых стерилизаторах  нового  поколения с  предельным  отклонением  t° в  стерилизационной камере +-1°С от  номинального значения.

***  Конкретные виды зарубежных упаковочных материалов     1-кратного применения. Рекомендованные для стерилизации  паровым  методом, а  также сроки  сохранения в  них  стерильности  изделий указаны в  методических  документах   данных  фирм.

           Срок  сохранения  стерильности изделий в  коробке  без  фильтра, в  двойной  мягкой  упаковке-3 суток: в пергаменте, бумаге  мешочной непропитанной, бумаге  мешочной влагопрочной, бумаге  упаковочной  высокопрочной, бумаге крепированной, в стерилизационной  коробке с  фильтром – 20 суток.

          Кратность использования пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги  мешочной  влагопрочной и бумаги   крепированной – 2 раза; бумаги упаковочной высокопрочной – 3 раза.

 

 

 

Метод контроля.

Средство контроля работы стерилизаторов

паровых  при режиме стерилизации, °С

Воздушных при режиме стерилизации

110+2 180 мин.

120+2 45мин

121±1 20мин

126±1 10мин

132±2 20мин

134±1 5мин

160+2 -10 150 мин

160±3 150 мин

180+2-10 60мин

180±3 60мин

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

Химичес-кий

Химические  индикаторы*

---

ИС-120   ---  (НПФ винар НПФ «АНВ»)

---        ИС—                 132                (НПФ                винар,                НПФ                АНВ)

---

---

ИС-160 (НПФ винар, НПФ  АНВ)

---

НС-180 (НПФ винар, НПФ АНВ)

Химический тест с антипирином или  резорцином

Химический тест с кислотой  бензойной.

Химичес-кий тест с бензамидом или сукцинимидом.

Химический тест с никотинами-дом, мочевиной или Д(+)-маннозой

Химический  тест  с левомицетином

Химический тест с кислородом винной или гидрохиноном, или тиомочевиной.

Физический.

Термометр ртутный стеклянный максимальный с диапазоном измерения от 0 до 150°С (ТП-7)

Термометр ртутный стеклянный максимальный с диапазоном измерения от 0 до 200°С (ТП-25); термометр ртутный стеклянный лабораторный с диапазоном измерения от 200°С

Физический

Мановакуумметр с диапазоном измерения от 0,1 до 0,5 Мпа

----

Биологический

Биологические  индикаторы.

Биотест со спорами тест – культуры Васillus stеаrоtеrmорhilus  ВКМ В-718

Биотест со спорами тест-культуры  Васillus liсhеnifоrmis  шт. G ВКМ В-1711 D.

·        Изменения цвета химических  индикаторов после цикла стерилизации является  свидетельством  достижения стерильности.     СЕСТРИНСКИЙ ПРОЦЕСС ПРИ  ПРОВЕДЕНИИ ПЛАЗМАФЕРЕЗА.   Условия  проведения:   1. Помещение для  проведения  плазмафереза  в  соответствии  с  пр. №  720  МЗ  СССР  должно соответствовать  операционной: ежедневная  текущая уборка не  менее  2-х  раз в  день с  применением  дезосредств, кварцевание  3 раза в  день  по  30  минут, генеральная уборка  1 раз в   7  дней  6% раствором  перекиси водорода с  моющим  средством, контроль внешней  среды  согласно графика,  спецодежда  медицинской   сестры (сменная обувь, халат или  хирургический  костюм, шапочка, марлевая маска, очки). 2.      Оборудование  и  аппаратура: -- рефрижераторная  ценрифуга  SОRVАLL   RС—3С  Plus                     --   плазмаэкстрактор                                           --  весы  чашечные                                           --  весы—Кантор                                           --  уравновешиватели  --  гемаконы, наполненые физраствором

                                          --  рабочий стол 

                              --  ёмкости  для дезинфекции  отработанной  плазмы, расходного  материала

                              --   дезинфицирующие  средства для обработки  использованного гемакона, отработанной  плазмы  (1,5% раствор гипохлорита кальция, сухой порошок гипохлорита), оборудования  и   мебели.        

                              -- антисептик – спирт 70% для обработки рук.

                                          

                               3. Медицинская сестра, подготовленная к  работе в  службе крови и прошедшая  инструктаж для  работы  на   рефрижераторной  центрифуге SОRVALL  RС—3С  Plus. 

                               4. Информация из отделения о планируемой  операции за 1 час  до плазмафереза.

                                5. Поступление  из отделения  контейнера (гемакона) с кровью.

 

Последовательность  действий  медсестры.

      Кабинет  трансфузионной  терапии  получает  заявку на  проведение плазмафереза  за 1 час  до операции. Кабинет  для  работы  был  подготовлен  с начала рабочего  дня: проводилась текущая уборка, кварцевание. При поступлении заявки на  плазмаферез  медицинская  сестра  выполняет следующие действия:

1. Готовит к  работе  рефрежираторную   центрифугу. Для этого необходимо выполнить следующие действия:

n             проверка  заземления

n             проверка   герметичности  крышек

n             проверка  подвижности  стаканов

n             подключение  к  электросети

n             введение программы (задаётся нужная  скорость  вращения, время и  температурный режим)

2. При поступлении крови из  отделения ( кровь поступает в двойных гемаконах) медицинская сестра:

n             регистрирует в журнале поступившую кровь  (Ф.И.О. пациента, дата проводимой манипуляции, кто проводит).

n             проводит взвешивание  гемакона  на  весссах-Кантор ( результат взвешивания выдаётся в миллилитрах)

n             отмечает в журнале регистрации  количество крови в мл.

n             уравновешивает на  чашечных   весах с применением  уравновешивателей – гемаконов, наполненных физраствором.

n             загружает в центрифугу гемаконы с  кровью и  уравновешиватели закрывает   герметично крышку  ротора, крышку  центрифуги;

n             включает  центрифугу по  заданной программе для плазмафереза: температура -- +18 С, скорость – 2800 оборотов в минуту, время – 5 минут. Примечание : во время работы  центрифуги происходит автоматическая блокировка  крышек  аппарата и открыть  её можно  только  после полной остановки.

3.      После полной  остановки центрифуги медсестра  осторожно, чтобы не было взбалтывания, достаёт  гемакон из  стакана, на  плазмаэкстракторе разделяет по  требованию из отделения кровь  на фракции: эритромассу и  плазму  крови. Проводит взвешивание полученной эритромассы на  весах-Кантор  (данные в миллиметрах).  Делает запись по  полученноой  эритромассе в журнале  регистрации.

4.      Врач визуально оценивает  полученный результат. Гемакон с  эритромассой  медсестра упаковывает в стерильное полотенце и  выдаёт в отделение для  переливания. Пациент всё  это время, затраченное на  центрифугирование и  плазмаэкстракцию, находится под  капельницей.

5.      Оставшуюся  в гемаконе плазму  медсестра выливает в мерную  ёмкость для  дезинфекции, засыпает сухим  порошком   гипохлорита кальция в соотношении: 1 часть гипохлорита на  5 частей  плазмы, экспозиция—1час ( пр. № 408 МЗ  СССР от  12. 07. 89г.). Гемаконы разрезает, соблюдая все меры  предосторожности, в 1,5% растворе гипохлорита кальция, замачивает в  этом   растворе, экспозиция – 1час (инструкция по сбору,  хранению  и  сдаче лома  медицинских  изделий  однократного применения из пластических  масс  от  24. 03. 89 г). После дезинфекции  плазма  выливается в  канализацию, использованный  гемакон  утилизируется.

6.      В заключение медсестра    протирает с применением  дезосредства  центрифугу, плазмаэкстрактор, весы, всё оборудование и  рабочий стол.

ВНИМАНИЕ! ВСЕ  МАНИПУЛЯЦИИ  С  КРОВЬЮ  ПРОВОДЯТСЯ С  СОБЛЮДЕНИЕМ  САНЭПИДРЕЖИМА СОГЛАСНО  ПРИКАЗОВ  МЗ   И  ВЕДОМСТВЕННЫХ  ИНСТРУКЦИЙ ПО СЛУЖБЕ  КРОВИ, А ТАКЖЕ С  СОБЛЮДЕНИЕМ  МЕР  БЕЗОПАСНОСТИ  МЕДИЦИНСКОЙ СЕСТРЫ.

При работе  с  кровью медицинская сестра     обязана иметь  на  рабочем  месте: аптечку «АНТИСПИД», инструкции по  применению  аптечки и  действиям  медсестры в случае аварии с  кровью, журнал травматизации, инструкцию по  последовательности  действий  в случае разлива крови  в  центрифуге.

 

 

 

 

 

 

ВЗЯТИЕ. ДОСТАВКА И ХРАНЕНИЕ  БИОМАТЕРИАЛОВ ДЛЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

ИССЛЕДОВАНИЕ   МОЧИ.

 

КТО  ПРОВОДИТ  ВЗЯТИЕ. Больной. У лежачих больных – медсестра.

УСЛОВИЯ  ВЗЯТИЯ. Материал  для исследования  рекомендуется  брать до начала  антибактериальной  терапии или в  интервалах  между  курсами   лечения, исследуют , как правило, утреннюю  порцию мочи. Следует  рекомендовать больному  накануне  по возможности  воздержаться  от  ночного  мочеиспускания до взятия  мочи  на  анализ.

До взятия мочи проводится  туалет  наружных  половых   органов.

 

   У ЖЕНЩИН – стерильным ватным  тампоном с  тёплой мыльной водой  промывают  влагалище и   губы движением  спереди  и  вниз. Затем  тщательно промывают тёплой водой и  высушивают  стерильным марлевым  тампоном. В течение всего мочеиспускания  пациентка  должна  держать  губы  разведёнными. Первая порция мочи не используется. Начиная с середины мочеиспускания моча собирается  в  стерильную посуду  (флакон с широким горлом или баночки с крышками) в количестве  3-10мл , плотно закрывается стерильной пробкой и отдаётся медсестре.

     У  МУЖЧИН – проводится туалет наружного отверстия мочеиспускательного канала  тёплой водой с мылом, затем промывается тёплой водой и высушивается стерильным ватным тампоном. Мужчины при мочеиспускании должны  оттянуть крайнюю  плоть, выпустить небольшое количество мочи, а среднюю  порцию в  количестве 3-10 мл собрать в стерильную посуду , закрыть стерильной пробкой и отдать  медсестре.

СБОР  МОЧИ У ДЕТЕЙ И НООВОРЖДЁННЫХ может представлять трудности. Рекомендуется  дать ребёнку  воды  или  другой жидкости и провести  туалет  наружных половых  органов. Моча собирается в стерильную посуду. При взятии мочи  у детей помогает медсестра и  мать ребёнка.

У ЛЕЖАЧИХ  БОЛЬНЫХ процедуру взятия мочи с проведением  туалета наружных   половых органов  проводит медсестра.               

   Катетеризация мочевого пузыря для рутинного исследования не рекомендуется, т.к. она может привести к  инфицированию  мочевых  путей. Катетером моча берётся только при  урологическом  диагностическом  исследовании.

     При взятии мочи прямым катетером  проводится тщательный  туалет  области  уретры.  Асептически в мочевой пузырь  вводится катетер. Дают стечь приблизительно 15мл мочи, и затем собирают мочу в стерильную посуду. Для диагностики  воспалительного процесса в  почках  моча собирается катетером из правой и  левой почки и  мочеточников  в  количестве  0,5-1,0 мл в стерильную посуду.

      При взятии мочи из постоянного катетера  необходимо: пережать дренажную трубку на  10мм  ниже уровня  отверстия уретры, дезинфицировать трубку спиртовым тампоном; введя иглу в  трубку, с помощью шприца забрать 5-10 мл  мочи  в  стерильную пробирку, снять зажим  с катетера.

 

УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ДОСТАВКИ. Желательно доставлять пробы  мочи в лабораторию немедленно, так  как  содержащие в  моче микробы  быстро размножаются  при  комнатной  температуре. При отсутствии  такой возможности моча может храниться при  комнатной  температуре в течение 1-2 часов и  не более 24 часов в холодильнике при  температуре +4 С от момента взятия  до начала исследования в  лаборатории.

 

ПРИМЕЧАНИЯ.

1.      Лаборатория обеспечивает медицинских  сестёр стерильной  посудой с широким отверстием.

2.       Моча не собирается из дренажного мешка, т.к. на  его наружной поверхности могут  присутствовать бактерии.

 

3.      Не исследуются  наконечники  постоянных  катетеров.

 

ВЗЯТИЕ. УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ДОСТАВКИ ВЫПОТНЫХ ЖИДКОСТЕЙ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ.

ИССЛЕДУЕМЫЙ МАТЕРИАЛ: выпотные жидкости  (экссудаты и  транссудаты)

ВЗЯТИЕ  МАТЕРАЛА: выпотную жидкость получают при  помощи  пункции  серозных полостей (плевральной, брюшной,  перикарда  и др.).

 

ПУНКЦИЮ  ПРОИЗВОДИТ  ВРАЧ.

 

УСЛОВИЯ ДОСТАВКИ И  ХРАНЕНИЯ: полученную при  пункции жидкость собирают в чистую  сухую  посуду, в лабораторию тотчас  же после пункции  направляют  всё  количество полученной  жидкости. Для предотвращения свёртывания  крови  и   потери  клеточных  элементов (со сгустком) и жидкости добавляют  лимоннокислый  натрий ( 1 грамм    на 1 литр жидкости), тщательно  перемешивают стеклянной  палочкой.

    Если количество жидкости слишком велико  (несколько литров), то жидкость отстаивают, сливают  верхний слой, а  отстоявшийся  нижний  (в пределах   1 литра) доставляют в лабораторию, добавляют  консервант, чтобы предотвратить свёртывание ( 1грамм лимоннокислого натрия на  1 литр жидкости), тщательно перемешивают стеклянной палочкой.

 

ВЗЯТИЕ. УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ   И  ДОСТАВКИ СПИННОМОЗГОВОЙ ЖИДКОСТИ ДЛЯ ЛАБОРАТОРНОГО  ИССЛЕДОВАНИЯ.

 

     ВЗЯТИЕ МАТЕРИАЛА.

    Спинномозговую жидкость  получают  путём люмбальной  пункции, которую проводит  врач – клиницист. Люмбальную пункцию производят между остистыми отростками  3 и  4 или 4   и 5  поясничных  позвонков. Для проведения пункции укладывают   больного  на  бок, при этом ноги   должны   быть  согнуты в коленях и  притянуты к   животу, чтобы  обеспечить согнутое  положение  позвоночника.

     Чтобы  найти место пункции, проводят  линию (тампоном, смоченным йодом), соединяющую высшие точки гребней  подвздошных  костей  (линия Якоби). Это линия  обычно пересекает остистый отросток  4 поясничного позвонка  (верхний край  5 поясничного позвонка). Кожу тщательно дезинфицируют, вводят иглу с мандреном. Когда игла достигает  подпаутинного пространства (расстояние от поверхности кожи до  канала  6-7см), мандрен вынимают  и  собирают вытекающую жидкость. Количество жидкости , извлекаемой  без вреда для  больного, --  8-10мл. Место  пункции  закрывают  стерильным  материалом,  больного оставляют в  положении  лёжа на спине без  подушки в течение  1 суток.

 

    УСЛОВИЯ  ДОСТАВКИ И ХРАНЕНИЯ  МАТЕРИАЛА. В лабораторию ликвор  должен  быть  доставлен не медленно после   пункции  в стерильных пробирках, закрытых стерильными ватными  пробками. Для предотвращения  образования  сгустка  фибрина взятие необходимо проводить  с ЗДТА.

 

    Рекомендуемое для  исследования  количество  ликвора – 10мл, которое лучше доставлять в лабораторию в двух  пробирках (для химического  и   микроскопического исследования). Наличие примеси крови должно быть обязательно отмечено.

 

      

    Подсчёт клеток в камере  и  приготовление осадка необходимо выполнять  В ТЕЧЕНИЕ  30  МИНУТ  ПОСЛЕ  ПУНКЦИИ!

    При невозможности немедленного исследования хранить при  температуре  2-8 С (лучше пластиковой, а  не  стеклянной пробирке); для  подсчёта клеток в  камере – не более 1 часа, для определения  лактата – 3 часа (нативный ликвор) и 1 час с ЭДТА; для определения глюкозы – 3дня,  для   определения белка – до 6 дней.

ПРИМЕЧАНИЕ. Повторную пункцию больному  рекомендуется  проводить не ранее, чем через неделю.

ВЗЯТИЕ. УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ  И   ДОСТАВКИ   МАТЕРИАЛА  ДЛЯ ПРОВЕДЕНИЯ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ  ИССЛЕДОВАНИЙ.

 

       Для   исследования  гематологических  показателей используются  КАПИЛЛЯРНАЯ  и   ВЕНОЗНАЯ  кровь. Взятие капиллярной  крови, как  правило, осуществляется  лаборантом, венозной – медицинской  сестрой.

 

         ПОДГОТОВКА ОБСЛЕДУЕМЫХ.

         Следует соблюдать  следующие условия  подготовки  пациентом:

n             взятие крови (венозной и  капиллярной) осуществляется после 15 минутного  отдыха обследуемого;

n             курение и    приём  алкоголя  непосредственно перед  исследованием  исключается;

n             взятие крови  осуществляется натощак в утренние часы  (8-10часов), пациент  во  время  взятия  сидит, у тяжёлых больных взятие крови может производиться  лёжа. В  случае необходимости     взятие крови  может проводиться в  любое время  суток.

             УСЛОВИЯ ПОЛУЧЕНИЯ  ВЕНОЗНОЙ КРОВИ.

 

             Венозную кровь,  как правило, забирают из локтевой вены. В случае  необходимости её можно  получить из любой  вены.

              При взятии  крови из вены  необходимо избегать: мест  шрамов, гематом, вен, используемых для  переливания   растворов, ножных вен.

 

               ОБОРУДОВАНИЕ.

Можно использовать три  варианта  пункционных  систем:

n             одноразовые пластиковые системы (контейнеры);

n             одноразовые шприцы;

n             иглы с внутренним  диаметром    0,55-0,65 мм.

 

              ДОПОЛНИТЕЛЬНОЕ  ОБОРУДОВАНИЕ:

n             манжета  или жгут для  пережатия  руки;

n             спирт 70%

n             ватные или марлевые  стерильные  шарики;

n             бинт;

n             пластырь;

n             ёмкости для сброса  использованных тампонов  и  шприцев.

         При  взятии  крови  следует  строго соблюдать правила асептики и  антисептики в соответствии с действующими  приказам  Минздрава и  инструкциями.

         Взятие крови необходимо проводить в  одноразовых  резиновых перчатках; в  тех  случаях,  когда   это невозможно, перед  каждым  взятием  перчатки  следует  обрабатывать 70% спиртом. Всё оборудование для взятия крови, включая одноразовые  шприцы, системы,  иглы, бинты, ватные и  марлевые тампоны, пластыри должны  быть  стерильными.

          Дезинфекция и стерилизация  оборудования  проводится  в соответствии с  ОСТом  42-21-2-85;   пр. МЗ  СССР № 408  от  12.07.89г;  инструкцией  № 42-28/39-90  от  05.06.90г.

 

       МЕТОДИКА ПОЛУЧЕНИЯ  ВЕНОЗНОЙ КРОВИ. Обследуемый  либо  сидит,  либо лежит. Его  положение должно быть удобным, рука свободно вытянута  вперёд и  прочно лежит на  подушке. Вены пережимаются  манжетой на  время  не  более  30 секунд (пульс должен прощупываться). Место  пережатия должно  быть выше места  прокола на   8-10 см. После  наложения манжеты  кисть руки  пациента должна  быть сжата в   кулак, после этого проводится промывание  тампоном со спиртом места  прокола.

        После высыхания  кожи  (несколько секунд) левой  рукой  медсестры  обхватывается рука  пациента, большим пальцем  придерживается  вена (кожа должна быть  натянута  против  касания), а правой  рукой  в  вену  вводится  игла  вакуумной   пробирки  или  шприца. Игла  острием  направлена  вниз, заточенная сторона  -- вверх. Кожа прокалывается  под  углом 20 градусов. Кровь  должна  литься свободно. Пережатие  освобождается после  правильной   установки  иглы.

        После получения необходимого количества крови  тампоном со  спиртом  накрывается  место взятия, игла  осторожно  удаляется. Руку  не следует сгибать в течение  15-20сек. После  этого   накладывается  стерильная  повязка или пластырь.

 

УСЛОВИЯ И  ТЕХНИКА  ВЗЯТИЯ ВЕНОЗНОЙ  КРОВИ  С  ЭДТА.

 

         Пробирки  с ЭДТА должны  быть чистыми, плотно закрываться. При взятии  крови  пробирка  заполняется  ею наполовину, затем  содержимое  хорошо  и  быстро  перемешивается (не встряхивая), далее заполняется  кровью  до  необходимой  отметки. Набирая кровь, пробирку необходимо вращать, затем плотно закрыть  и  тотчас  многократно покачать (во избежание пенообразования  -- НЕ  ТРЯСТИ!). Перед  разделением  кровь также  необходимо тщательно и  осторожно перемешать. Объём  крови, необходимый  для  исследования, заранее  маркируется на пробирке в   соответствии с  количеством  антикоагулянта, помещенного в пробирку. Непосредственно перед  исследованием  кровь перемешивается  лёгким  покачиванием  в  течение 2 минут  (30 покачиваний  в минуту).

 

 

УСЛОВИЯ  ПОЛУЧЕНИЯ КАПЛЛЯРНОЙ  КРОВИ.

 

Капиллярную кровь у  взрослых    получают из  ладонной   поверхности  рук, мочки  уха,  у  детей—из  боковой поверхности  пятки или  подошвенной поверхности  большого пальца  ноги,  или мочки   уха. Глубина прокола –2-3мм.  Соблюдение правил  асептики – антисептики;  смотри  «условия получения   венозной  крови».

ОБОРУДОВАНИЕ:

    --    одноразовые ланцеты   или специальные   иглы для  взятия  капиллярной крови;

    --   пробирки со  специальным   силиконовым  покрытием   или  антикоагулянтом;

    --   предметные стёкла;

    --   пипетки; 

    --   капилляры;

    --   ватные и  марлевые  тампоны;

    --   спирт 70%

    --   ёмкости  для  сброса  тампонов и  скарификаторов, а также  использованных миикропипеток.

 

 

 

 

МЕТОДИКА ПОЛУЧЕНИЯ  КАПИЛЛЯРНОЙ  КРОВИ.

 

        Обследуемый либо  сидит, либо лежит. Вначале тампоном со спиртом тщательно протирается  поверхность кожи для  того, чтобы  удалить грязь и  частицы, которые могут быть сосчитаны  как фрагменты  клеток  крови. После высыхания (несколько секунд) и  восстановления  кровообращения  кожа  прокалывается   ланцетом  или специальной иглой  для взятия  крови. Первая капля  крови  удаляется сухой  стерильной  ватой,  так  как  содержит  кусочки  повреждённой  кожи. Вторая капля используется для  исследования. Пункция  должна быть   такой,  чтобы  формировалась свободно падающая капля. Кровь не  должна  выдавливаться. Во время  взятия  строго соблюдаются  правила асептики.

 

СУЩЕСТВУЮТ  4 СПОСОБА ВЗЯТИЯ  КАПИЛЛЯРНОЙ  КРОВИ:

 

1.      После  прокола  кожи  пальца несколько капель крови (не  менее  3-4) помещают на  индивидуальное предметное стекло  или   гнездо  пластикового планшета, перемешивают и используют для  работы.

2.      Кровь  набирают  в индивидуальные, стерильные, предварительно выверенные  пипетки или капилляры непосредственно с поверхности кожи   проколотого  пальца  больного.

3.      Кровь в количестве  40 мкл  набирают  стерильным  индивидуальным  капилляром  Панченко, предварительно смоченным  стерильным  раствором  цитрата натрия (соотношение крови и  цитрата  4:1 по объёму).

4.      После прокола   кожи  6-8 капель крови осторожно спускают в пластиковую пробирку с предварительно  помещённым в неё  7,5%  раствором  трилона Б (Nа2 ЭДТА) – 1 капля (4-7мкл). Содержимое пробирки тщательно перемешивают, вращая её между ладонями.

 

После получения необходимого количества крови  необходимого протереть поверхность кожи тампоном, смоченным  спиртом, оставив затем чистый  тампон на  пальце  (или  другой   повреждённой поверхности)  на 1-2 минуты до  полной  остановки кровотечения.

 

УСЛОВИЯ  ТРАНСПОРТИРОВКИ ВЕНОЗНОЙ   И  КАПИЛЛЯРНОЙ  КРОВИ.

 

       Правильно собранная  венозная  и  капиллярная  кровь  должна быть своевременно  доставлена в лабораторию. Время  доставки  не  должно превышать 60 минут после взятия  крови. Пробирки  должны быть промаркированы, упакованы и плотно закрыты.  Упаковка должна  быть удобной для  транспортировки. При  транспортировке биологического материала должны  строго  соблюдаться  правила техники безопасности, асептики и  антисептики.

ОШИБКИ ПРИ  ОПРЕДЕЛЕНИИ ГРУППЫ КРОВИ ТЕХНИЧЕСКОГО ХАРАКТЕРА.

 

1.      Перепутывание стандартных  сывороток.

2.      Перемешивание стандартных сывороток между собой.

3.      Неправильное соотношение  между стандартными  сыворотками  и эритроцитами  больного.

4.      Преждевременная оценка  результата.

5.      Склеивание эритроцитов в монетные столбики.

6.      Слишком высокая   или низкая  температура в помещении. Чтение результата после 5  минут.

7.      Гемолиз испытуемой  крови (если эритроциты брались пипеткой, промытой  не  физ. раствором, а проточной или  дистиллированной водой.

8.      Попадание слизи в каплю крови.

9.      Использование старого образца крови, гемолизированного, инфицированного образца.

10.  Использование сывороток с истекшим  сроком годности.

ВЗЯТИЕ. ДОСТАВКА И  ХРАНЕНИЕ  БИОМАТЕРИАЛОВ ДЛЯ  МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ   ИССЛЕДОВАНИЙ.

ИССЛЕДОВАНИЯ  РАН.

(Инфицированные рваные, проникающие ранения, послеоперационные раны, ожоги, пролежни).

 

    ИССЛЕДУЕМЫЙ МАТЕРИАЛ. Гной, раневое отделяемое, кусочки инфицированных тканей.

    КТО ПРОВОДЯТ ВЗЯТИЕ. Врач, медсестра.

    УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. Кожу вокруг раны  предварительно  обрабатывают  спиртом (70%) или  другим  антисептиком. Некротические массы, детрит, гной удаляют  стерильной  салфеткой, определяют места, где скапливается  гной, расположены некротические ткани, места крепитации. Гной или  другой экссудат  собирают  шприцем и  переносят в  максимально  возможном  количестве  в стерильную пробирку. При  необходимости, когда объёмный  метод  невозможен, могут  быть  использованы  стерильные тампоны. Он используется  для сбора  очень малых  количеств гноя или  отделяемого  из  мест, которые  требуют  осторожного обращения. Взятие  материала проводится круговыми  движениями стерильным    тампоном  от  центра  к  периферии  раны. Материал для исследования  берут двумя тампонами, один из которых  используют  для  микроскопии, а другой для посева.

      Отделяемое из  дренажей берут шприцем или  используют  концы  удалённых  дренажных  трубок.

       Исследуемый материал асептически  переносится  в  стерильную пробирку  для  биожидкости. При отсутствии  стерильной посуды  исследуемый  материал  транпортируется в  шприце с закрытой  иглой.

 

        УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ДОСТАВКИ. Патологический материал  должен быть доставлен  в   лабораторию  немедленно. Если  немедленная  доставка невозможна, образцы  должны  быть помещены в  холодильник и  храниться в  нём  при  температуре  +4 С в течение 2 часов.

 

ИССЛЕДОВАНИЕ  АБСЦЕССА.

 

        ИССЛЕДУЕМЫЙ  МАТЕРИАЛ. Гной, биоптат стенок  абсцесса.

        КТО ПРОВОДИТ   ВЗЯТИЕ. Врач.

        УСЛОВИЯ ВЗЯТИЯ. При взятии материала из  закрытых  полостей   кожа в месте прокола в течение 1-2 минут  дезинфицируется  70% спиртом или другими  антисептиками. Исследуемый материал в максимально  возможном количестве берётся стерильным шприцем и  переносится в асептических  условиях в стерильную посуду. При отсутствии  стерильной ёмкости  материал  может быть оставлен в  шприце с  закрытой  иглой.

        УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ДОСТАВКИ. Исследуемый  материал  немедленно доставляется  в лабораторию. Если немедленная доставка невозможна, образцы должны  быть помещены в холодильник  при  температуре +4С и  храниться в течение  2 часов.

 

                  

 

                                   

 

ДОКУМЕНТАЦИЯ ПРОЦЕДУРНОГО КАБИНЕТА

 

Журнал врачебных назначений

ФИО Пациента	Палата  пациента	Наименование процедуры (лек. ср-ва)	Кол-ва назначенных процедур	Даты проведения процедур

 

Журнал учета взятия крови для биохимических исследований

№ п/п	ФИО пациента	Кровь на исследования	Дата взятия крови	Роспись м/с

 

Журнал учета крови на RW

№ п/п	ФИО пациента	Возраст	№ истории болезни	Дом. адрес	Дата взятия крови на RW	Дата получения анализа	Результат

 

Журнал учета крови на СПИД

№ п/п	ФИО пациента	Возраст	№ истории болезни	Дом. адрес	Дата взятия крови на RW	Дата получения анализа	Результат

 

Журнал учета крови и кровезаменителей

№ п/п	Дата переливания		Переливание повторное или первичное		ФИО пациента		Возраст детей до 1-го года		№ истории болезни	Группа крови и резус фактор больного		Показания к переливанию
1	2		3		4		5		6	7		8
Трансфузионная среда
Группа крови и резус принадл.		Компоненты и препараты крови (группа и резус-принадл.)		Гемодинамич. Препараты крови (полиглюкин, желатиноль)		Дезинаткискационные (гемодез, полидез)		Препарат для парентерального белкового питания (гидролизат казеина, аминопептид)			Доза перелитой трансфионной среды		Всего перелито трансфузионной среды
9		10		11		12		13			14		15

 

Паспорт флакона
№ этикетки (серия препарата, заведение-изготовитель)	Дата заготовки (выписка препарата)	Способ переливания	Трансфузионные реакции (слабая, средняя, сильная)	Осложнения после переливания крови	Подпись врача (разборчиво)
16	17	18	19	20	21

 

Журнал учета качества предстерилизационной очистки

Дата	Режим стерилизации	Наименование	Кол-во стер-мого материала	Упаковка	Время стерилизации			Химический контроль	Подпись м/с
					начало	окончание	выемка

 

 

Журнал качества предстерилизационной очистки

Дата	Наименование предметов	Результаты		Подпись того, кто ставил пробу
		полож.	отриц.

Журнал учета сильнодействующих средств

Дата

Приход

Расход

Роспись

Роспись

откуда получено

кол-во

роспись в получении

дата выдачи

ФИО больного

№ истории

кол-во

остаток

м/с

врач

сдал м/с

принял м/с

зав. отдел.

аптека ЛПУ

4 ампулы

Ст. м/с Кирова

Селезнева В.П.

12004

1 ампула

3 ампулы

 

Журнал остродефицитных средств

Дата	Приход			Расход					Роспись
	откуда получено	кол-во	роспись в получении	дата выдачи	ФИО больного	№ истории	кол-во	остаток	сдал м/с	принял м/с	Зав. отдел.
	аптека ЛПУ	4 ампулы	Ст. м/с Кирова		Селезнева В.П.	12004	1 ампула	3 ампулы

 

Журнал учета наркотических лекарственных средств

Приход

Расход

Роспись

Дата

откуда

кол-во

роспись

дата выдачи

ФИО больного

№ истории

кол-во расхода

остаток

м/с

врача

зав. отдел

сдала м/с

приняла м/с

 

Журнал учета работы процедурного кабинета

Дата	Подкожная инъекция	В/м	В/в	Капель.	Б/о/х	Группа крови	Р-я Вассермана	ВИЧ	Итого	Роспись
	40	35	5	4	5	5	2	2	98	Сидорова
	42	38	5	5	4	4	1	1	100	Сидорова

 

Журнал отметки температуры в холодильнике

Дата	Температурный режим				Роспись
	10.00	+5ºС	16.00	+5ºС	Сидорова

 

Журнал сдачи шприцев и систем ЦСО

Дата	1,0	2,0	5,0	10,0	20,0	Иглы	Сдал	Принял
	10	20	10	20	5	70	Сидорова	Петрова
	15	10	20	10	5	65	Сидорова	Петрова

 

Журнал передачи шприцев и систем по мене

Дата	1,0	2,0	5,0	10,0	20,0	Иглы	Системы	Сдал	Принял
	10	15	10	10	5	60	5	Сидорова	Петрова

 

Журнал сдачи ключей от сейфа

Дата	Время	Сдал	Принял

Журнал аварий

№/п	Дата аварии	Ф.И.О., должность пострадавшего	Участок, место  работы	Ф.И.О. больного с биологической жидкостью, кровью, с которой работал персонал	Причина аварии	Лабораторные исследования, профилактика, прием лекарств, дата и доза.	Примечание, Ф.И.О., роспись свидетелей аварии

 

ОХРАНА ТРУДА ПРОЦЕДУРНЫХ МЕДИЦИНКИХ СЕСТЕР

 

Помимо общих факторов риска, представляющих потенциальную опасность для здоровья работников, в процедурном кабинете имеются дополнительные риски. Это:

1)      риск заражения вирусным гепатитом, СПИДом;

2)      риск при работе с дезинфекантами;

3)      риск при работе со стерилизаторами и автоклавами;

4)      риск заражения инфекционными заболеваниями, если таковое зарегистрировано в отделении.

Остановимся поподробнее на охране труда по каждому из перечисленных рисков.

ПРОФИЛАКТИКА ВИРУСНОГО ГЕПАТИТА И СПИДа.

Предупреждение профессиональных заражений.

Профилактика профессиональных заражений медицинских работников проводится в соответствии с правилами, которые сводятся к максимальному предотвращению во время работы возможности  аутоинокуляции кровью, содержащей вирус ГВ. Все манипуляции, при которых может произойти загрязнение рук кровью или сывороткой, следует производить в резиновых перчатках. Во время работы все повреждения на руках должны быть закрыты напальчниками,  лейкопластырем. При угрозе разбрызгивания крови или сыворотки следует работать в масках.  Запрещается медицинскому персоналу проведение парентеральных процедур с использованием мединструментария, предназначенного для больных, прием пищи и курение в лабораториях и помещениях, где проводятся процедуры с больными. При планировке и строительстве  ЛПУ необходимо предусмотреть наличие в процедурных кабинетах 2 раковин – для мытья рук и мытья (обработки) медицинского инструментария. Разработку, мойку и пропаласкивание медицинского инструментария, использованных пипеток и лабораторной посуды, приборов и аппаратов, соприкасавшихся с кровью и сывороткой людей, нужно проводить после предварительной дезинфекции в резиновых перчатках. Следует  строго соблюдать правила личной гигиены. После любой процедуры, в том числе парентерального вмешательства (инъекций, забора крови и т.п.), проводится тщательное двухкратное мытье рук в теплой проточной воде с мылом.  Руки необходимо вытирать индивидуальным полотенцем, сменяемым ежедневно, или салфеткой одноразового использования. При обработке рук следует избегать частого применения дезинфекантов, которые способны вызвать раздражение кожи и дермативы, что облегчает проникновение возбудителя. Хирургам для мытья рук не следует пользоваться жесткими щетками. Бланки направлений в лабораторию на исследование категорически запрещается помещать в пробирку с кровью. Их следует приклеивать к внешней стороне поверхности емкости. Необходимо маркировать пробирки с кровью, взятой для анализа, у носителей НвsАg и больных ХГВ. В клинико-диагностических лабораториях, исследующих кровь или сыворотку людей, следует работать с соблюдением режима, предусмотренного для работы в микробиологических лабораториях. При работе с кровью, сывороткой или другими материалами нужно пользоваться с резиновыми грушами или автоматическими пипетками с  одноразовыми наконечниками. Насасывание сыворотки ртом не допускается. В случае загрязнения рук кровью следует немедленно обработать их тампоном смоченным дезинфицирующим раствором (1% раствор хлорамина), и вымыть их двукратно теплой проточной водой с мылом, насухо вытереть индивидуальным полотенцем или салфеткой одноразового использования. Поверхности рабочих столов в конце каждого рабочего дня (а в случае загрязнения кровью - немедленно) следует обработать 3% раствором хлорамина. Все виды использованных пипеток, пробирок, предметные стекла, резиновые груши должны быть обеззаражены погружением в сосуды с дезинфицирующим раствором, а затем подвергнуться предстерилизационной   очистке и стерилизации согласно ГОСТа 42-21-2-85. Медицинские работники, имеющие по роду своей профессиональной деятельности контакт с кровью и ее компонентами, подлежат обследованию на наличие НвsАg  при поступлении на работу, а далее не реже одного раза в год. При выявлении НвsАg проводится углубленное клинико-лабораторное обследование врачом – инфекционистом. Лица с наличием НВs-антигенемии отстраняются от заготовки, переработки и переливаний крови и ее препаратов. Категории медицинских работников с выявленной НВs-антигенемией, относящихся к группам риска,  обязаны соблюдать правила личной гигиены, направленные на предупреждение заражения пациентов ГВ. Все парентеральные манипуляции должны проводится этими лицами в резиновых перчатках. Временно отстраняются от работы хирурги, урологи, гинекологи, стоматологи, операционные и процедурные сестры и т.п., имеющие нарушение целости кожных покровов рук. Указанные ограничения с этих категорий медработников снимаются при повторных отрицательных исследованиях крови на наличие НвsАg высокочувствительными методами.

Памятка по забору и доставке крови на СПИД.

Забор крови:

1.      В сухую центрифужную пробирку забрать 4-5 мл венозной крови.

2.      Пробирки с кровью нужно пронумеровать. Номера на пробирках и направлениях должны совпадать. Пробирки закрываются ватно-марлевой или резиновой пробкой и устанавливаются в контейнер с уплотнением (вата, поролон).

3.      Категорически запрещается  забор крови в пробирки с отбитыми краями.

4.      Работать с исследуемым материалом только в резиновых перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Особое внимание следует обращать на условия забора крови, чтобы исключить заражение. Работать надо осторожно во избежание случайных уколов иглой, разбитой посудой.

5.      Кровь может храниться в холодильнике более суток. Не подлежит доставке в лабораторию гемолизированная и проросшая кровь. Каждая пробирка маркируется, составляется направление в 2 экземплярах.

Доставка крови:

1.      Забранную кровь необходимо доставить в лабораторию в  день забора с 8.30 до 10.00.

2.      Кровь доставляется в лабораторию в жестяном контейнере.

3.      Отдельно доставляется направление со сведениями об обследуемых лицах.

Необходимо указать:

§         диагноз;

§         регистрационный номер;

§         номер истории болезни;

§         отделение, палату;

§         Ф.И.О. (полностью);

§         пол;

§         возраст;

§         домашний адрес (полностью);

§         код;

§         дату забора крови;

§         дату доставки материала;

§         фамилию лица, забравшего материал.

Направления доставляются в 2 экземплярах:

1-ый экз. – направление на каждого обследуемого;

2-ой экз. – общее направление, где списком  перечислены сведения о всех обследуемых.

 

ИНСТРУКЦИЯ

по первичным мероприятиям на случай аварии при работе с кровью и другими биологическими жидкостями больного ВИЧ-инфекцией

1.      При проколе или порезе немедленно вымыть руки в перчатках проточной водой с мылом, снять перчатки, выдавить каплю крови, обработать рану 70º спиртом, затем, 5% раствором йода. Не тереть!

2.      В случае заражения кожных покровов биологической жидкостью немедленно обработать ее 70º спиртом, обмыть водой с мылом и повторно обеззаразить 70º спиртом. Не тереть!

3.      При попадании биологической жидкости на слизистые оболочки глаз, их немедленно обмывают струей воды и вводят несколько капель 1% р-ра борной кислоты : слизистые носа обрабатывают путем  закапывания 1% р-ра протаргола, рот и горло прополаскивают 70º спиртом, разведенным наполовину с водой.

4.      Авария регистрируется  в журнале регистрации аварий отделения, ставят в известность об этом руководители отделений и администрация больницы.

5.      Провести обеззараживание места аварии 3% р-ром хлорамина и кварцевание воздушной среды в течение 30 минут.

6.      Аптечка «Анти-СПИД» включает в себя:

-         ватные и марлевые тампоны по 5 штук (обработка кожных покровов, слизистых);

-         70º спирт – 100 мл (обработка кожных покровов, прополаскивание полости рта, горла);

-         1% р-р протаргола – 1 флакон (закапывание в нос);

-         5% р-р йода – 1 флакон (обработка раневой поверхности);

-         1% р-р борной кислоты (промывка слизистых глаз);

-         лейкопластырь – 1 упаковка (использование при наличие микротравм);

-         напальчники – 5 штук (использование при наличие микротравм);

-         ножницы;

-         пипетки глазные – 5 штук;

7.      Контроль за хранением и использованием аптечки «Анти-СПИД», проведением п/э мероприятий возлагается на заведующую отделениями и старших медсестер.

8.      За пострадавшими устанавливается медицинское наблюдение с анализом крови на ВИЧ через 3, 6, 12 месяцев.      

 

Укладка для забора крови на форму 50:

1.      Бикс.

2.      Шприцы с иглами одноразовые, не менее 2.

3.      Чистые перчатки.

4.      Стеклянные чистые, сухие пробирки с резиновыми пробирками.

5.      Штатив.

6.      Стерильные ватные тампоны.

7.      70º этиловый спирт.

8.      1-2% водный раствор борной кислоты для закапывания в глаза.

9.      1-2% раствор проторгола для закапывания в нос.

10.  6% раствор перекиси водорода.

11.  Лейкопластырь.

 

СРОКИ ГОДНОСТИ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ, ИЗГОТОВЛЕННЫХ В АПТЕКЕ

1.      Инъекционные р-ры, изготовленные во флаконах, герметично укупоренных резиновыми пробками под обкатку                                                                                                       30 суток

за исключением:

а) р-ра глюконата кальция 10%                                                                                         7 суток

б) р-ров фурагина 0,1%                                                                                                       7 суток

в) р-ра дибазола 0,5%, 1%                                                                                                60 суток

Вскрытые флаконы должны использоваться в течение суток, на флаконе ставить дату вскрытия.

2.      Глазные капли

Глазные капли, изготовленные во флаконах, герметично укупоренных резиновыми пробками  под обкатку, простерилизованные                                                              30 суток

за исключением:

а) р-ра левомицитина 0,25%                                                                                              7 суток

б) капель, содержащих р-р аскорбиновой кислоты                                                         7 суток

Глазные капли, изготовленные асептически (не простерилизованные) при температуре не выше 25º                                                                                                                                     2 суток 

В холодильнике (3 – 5ºС)                                                                                                         5 суток

3.      Растворы и микстуры для внутреннего применения:

-         микстура Кватера (в холодильнике при t= 3 - 5ºС)                                                 10 суток

-         микстура от кашля с нашатырно-анисовыми каплями при комнатной t                 2 суток

-         р-р сульфата магния 33%                                                                                            15 суток

-         настоя травы термопсиса – (в холодильнике)                                                          10 суток

-         р-р амидопирина 0,5 – 1% (в холодильнике)                                                             5 суток

Остальные микстуры, содержащие настои, отвары, слизи (в холодильнике) не более    2 суток

Остальные р-ры для внутреннего применения                                                                   10 суток

4.      Порошки состава:

-         димедрол 0,005                                                                                                            30 суток

-         сахар 0,2                                                                                                                    

-         остальные                                                                                                                    10 суток

5.      Капли для носа и для наружного применения:

-         р-р борной кислоты 2%                                                                                              10 суток

-         р-р адреналина г/х 0,1% - при t не выше 25ºС                                                         10 суток

в холодильнике 3 – 5 ºС                                                                                                               30 суток

-       р-р колларгона 3%                                                                                                       30 суток

-       р-р протаргола 2%                                                                                                       30 суток

-       р-р люголя 0,25% на глицерине                                                                                 30 суток

-       остальные                                                                                                                     10 суток

6.      Водные р-ры, содержащие бензилпенициллин и глюкозу                                             1 сутки

7.      Эмульсии, суспензии                                                                                                          3 суток

8.      Остальные лекарственные формы

     (суппозитории, мази для наружного применения)                                                         10 суток

 

Основание:              Приказ МЗ СССР от 03.04.91 г. № 96

                                 «Об усилении контроля качества лекарственных

                                 средств, изготовленных в аптеке»  

  

 

 

 

 

ЛЕКАРСТВЕННЫЕ СРЕДСТВА, ПОДЛЕЖАЩИЕ ХРАНЕНИЮ В ХОЛОДИЛЬНИКЕ

В местах хранения лекарственных препаратов должен соблюдаться температурный и световой режим. К числу лекарственных средств, требующих защиты от воздействия повышенной температуры, относятся:

-         бактерийные препараты (вакцины, сыворотки, анатоксины, бактериофаги);

-         антибиотики;

-         гормональные препараты;

-         витамины, витаминные препараты;

-         препараты,  содержащие гликозиды;

-         органопрепараты:            АТФ                            Препараты инсулина

Маммофизин             Гепарин

Окситоцин                 Адреналин

Питуитрин                 Норадреналин

Фолликулин               Фибс

Эрготал                      Лидаза

Плазмол                      Интерферон

Пирогенал                  Бийохинол

                                    Бисмоверол

-         свечи, а также настои, отвары должны храниться при температуре от 2º до 10ºС.

 

Приказ МЗ СССР от 15.05.81 г. № 520

 

ЛЕКАРСТВЕННЫЕ СРЕДСТВА, НЕСОВМЕСТИМЫЕ В ОДНОМ ШПРИЦЕ

1.      Аскорбиновая кислота 5%; пантотенат кальция 20% - возникает  желтое помутнение раствора.

2.      Аскорбиновая кислота 5%; эуфиллин - образуется  аскорбинат этилен диамина и выделяется свободный теофиллин.

3.      Атропин сульфат 0,1%; промедол 1%, 2%; кордиамин в ампулах – несовместимы.

4.      Атропин сульфат 0,1%; промедол 1%; витамин В₁ 5% - происходит уменьшение анальгезирующего действия промедола под влиянием атропина.

5.      Атропин сульфат 0,1%; промедол 1%; новокаин 0,5% -  уменьшается анальгезирующее действие промедола.

6.      Диафиллин 2,4%; папаверин 2% - в осадок выпадает папаверин – основание, под влиянием щелочной среды диафиллина.

7.      Диафиллин 2,4%; дибазол 1% - в осадок  выпадает основание дибазола.

8.      Диафиллин 2,4%; глюконат кальция – выпадает обильный осадок.

9.      Дуплекс; витамин В₁ 6% - раствор мутнеет.

10.  Кордиамин; дибазол 1% - образуется осадок: основание дибазола под влиянием щелочнореагирующего кордиамина.

11.  Кофеин н/б 20%; папаверин 2% - в осадок выпадает бензойная кислота.

12.  Прозерпин 0,05%; платифиллин 0,2% - препараты являются фармакологическими антагонистами.

13.  Витамин В₆  5%; кокарбоксилаза – продукты гидролиза кокарбоксилазы усиливают аллергические реакции В_6. 

14.  Витамин В₆ 5%; прозерин 0,05% - под влиянием  прозерина снижается витаминная активность.

15.  Гамма-глобулин; эуфиллин 2,4%, 24% - выделяется осадок.

16.  Строфантин-К 0,05%; новокаин 0,5% - вводятся отдельно.

17.  АТФ 1%; глюконат кальция 10% - образуется осадок.

18.  Кордиамин 1%; дибазол 0,5% - под влиянием рН р-ра кордиамина сразу образуется белый кристаллический осадок – основание дибазола.

19.  Кордиамин 1%; дибазол 0,5%; папаверин 2% - то же.

20.  Кордиамин 1%; дибазол 0,5%; папаверин 2%; платифиллин 0,2% - то же.

21.  Магния сулььфат 25%; дибазол – под влиянием рН р-ра 25% сульфата магния образуется кристаллический осадок – основание дибазола.

22.  Аминазин 2,5%; димедрол 1%; морфин 1% - фармакологически несовместимы, возникает опасность угнетения дыхания.

23.  Промедол 1%; атропин сульфат 0,1%; дипразин 1-2,5% -  происходит уменьшение  анальгезирующего действия промедола под влиянием атропина.

24.   Стрептомицина сульфат 100 000 – 200 000; витамин В₁ 5% - смесь фармакологически несовместимая в связи с уменьшением активности стрептомицина.

25.  Гамма-глобулин с растворами различных витаминов – фармакологическая несовместимость; при совместном введении усиливается аллергическое состояние.

26.  Эритромицин; тетрациклин х/в – р-ры инактивируются.

27.  Стрептомицин 100 000 – 200 000; глюкоза 40% - фармакологическая несовместимость – уменьшается активность стрептомицина.

28.  Раствор Рингера; хлортетрациклин х/в – выпадает осадок.

29.  Витамин В₁₂; пантотенат кальция 20% - несовместимы.

30.  Витамин В₁ – 6%; витамин В₆ – 5%; витамин В₁₂ – витамин В₁₂ усиливает аллергизирующее действие витамина В₁.

 

ПОСТИНЪЕКЦИОННЫЕ ОСЛОЖНЕНИЯ

 

1.      Если при введении лекарственного средства на месте введения появляется припухлость, значит игла находится не в просвете вены и лекарство поступает в окружающую клетчатку. Нередко это сопровождается появлением  в месте пункции жжения и боли. Ряд лекарственных в-в, особенно 10% р-р хлористого кальция, вызывает раздражение подкожной клетчатки или некроз. Если это произошло, нужно оставить иглу на месте, отсоединить от нее шприц, а другим шприцем ввести через иглу в клетчатку 5 – 10 мл физиологического раствора для понижения концентрации попавшего в нее хлористого кальция, затем производится обкалывание в место пункции 0,25% р-ра новокаина в количестве 10 мл.

2.      Если образовалось кровоизлияние на месте прокола, то накладывается полуспиртовой компресс или повязка с гепариновой мазью.

3.      Флебит – воспаление венозного ствола.

4.      Воздушная эмболия возникает при технических погрешностях, когда в вену попадает воздух, попадание 100 мл воздуха является смертельным, но серьезные осложнения вызывают и меньшие количества воздуха. Для профилактики эмболии надо правильно и герметично монтировать систему (лучше всего использовать одноразовые системы).

5.      Повреждение нервных стволов может произойти при в/м и в/в инъекциях либо механически (при неправильном выборе места инъекции), либо химически, когда депо лекарственного средства оказывается рядом с нервом. Тяжесть осложнения может быть различна – от неврита (воспаление нерва) до паралича (выпадение функции).

6.      Тромбофлебит – воспаление вены с образованием в ней тромба – наблюдается при частых венепункциях одной и той же вены или при использовании недостаточно острых игл. Признаками тромбофлебита является боль, гиперемия кожи и образование инфильтрата по ходу вены. Температура тела может быть субфебрильной.

7.      Сепсис – может возникнуть при грубейших нарушениях правил асептики во время внутривенной инъекции или вливания, а также при использовании не стерильных растворов.

К отдаленным осложнениям, которые возникают через 2-3 месяца после инъекции, можно отнести вирусный гепатит Б, ни А, ни В (сывороточный гепатит) – инфекционное заболевание,  инкубационный период которого длится 2-6 месяцев, а также ВИЧ-инфекцию, при которой инкубационный период составляет от 6-12 недель до нескольких месяцев.

8.      Аллергические реакции на введение того или иного лекарственного средства путем инъекции могут протекать в виде крапивницы, острого конъюнктивита, отека Квинке. Самая грозная форма – анафилактический шок. О развитии аллергической реакции на введение лекарственного средства следует немедленно сообщить врачу и приступить к оказанию экстренной помощи.         

КАТЕГОРИЧЕСКИ НЕЛЬЗЯ ВВОДИТЬ В ВЕНУ МАСЛЯННЫЕ РАСТВОРЫ И СУСПЕНЗИИ !!!

 

САНИТАРНО-ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИЙ РЕЖИМ В ПРОЦЕДУРНОМ КАБИНЕТЕ

Методы дезинфекции медицинских инструментов:

v     кипячение в 2% р-ре питьевой соды (дистиллированная вода с натрием двууглекислым), экспозиция 15 мин, рекомендуется для изделий из стекла, металла, термостойких материалов, резины;

v     погружение в 3% р-р хлорамина на 60 мин (для туберкулеза – 5% на 240 мин), приготовление 3% хлорамина: 30 гр сухого хлорамина + 970 мл воды;

v     погружение в 6% р-р перекиси водорода на 60 мин  или 4% - 90 мин;

v     0,03% р-р нейтрального аналита – экспозиция 30 мин; 

v     пресепт 0,056% - экспозиция 90 мин (10 таблеток по 0,5 гр);

v     литезол 5% - экспозиция 15 мин (50 мл препарата + 960 мл воды);

v     лизоформин 3000 1,5% - экспозиция 30 мин (15 мл препарата + 985 мл воды);

v     лизоформин 3000 2% - экспозиция 15 мин (20 мл препарата + 980 мл воды);

v     виркон 1% - экспозиция 10 мин (10 гр  препарата + 980 мл воды);

v     дезоформ – экспозиция 60 мин (10 мл препарата + 990 мл воды);

v     дезоформ 3% - экспозиция 30 мин (30 гр препарата + 970 мл воды);

v     дезоформ 5% - экспозиция 10 мин (50 гр препарата + 950 мл воды);

v     глутарал 2% - экспозиция 15 мин;

v     спирт 70º - экспозиция 30 мин.

Расчет количества сухого дезинфекционного средства для приготовления дезинфицирующего раствора.

1.      Спирт 70º этиловый – только аптечное приготовление.

2.      Виркон 1% готовится: 1 пакетик (50 гр) на 5 литров воды, в меньшем объеме не разводится, неиспользованный дез. раствор годен к употреблению в течение 7 дней.

3.      Септабик 0,15% - 1,5 гр сухого в-ва разводится водой до объема 1 л.

4.      Пресепт:

4.1 Гранулы, порошок –навеску в 5 гр сухого препарата разводить дло объема 5 литров.

5.      Перекись  водорода (из 30% пергидроля):

5.1  4% р-р: 134 мл 30% пергидроля развести до 1 л водой.

5.2  6% р-р: 200 мл 30% пергидроля развести до 1 л водой.

6.      Хлорамин:

6.1  3% р-р хлорамина: 30 гр до 1 литра водой.

6.2  1% р-р хлорамина: 10 гр до 1 литра водой.

7.      Сайдекс – смешать флакон активатора в заданном объеме растворителя.

8.      НГХК (нейтральный гидрохлорид кальция):

8.1  0,25% - сухого в-ва развести до 1 литра водой.

8.2  1% - 10 гр сухого в-ва развести до 1 литра водой.

 

Предстерилизационная очистка медицинских изделий.

Предстерилизационной очистке должны подвергаться все медицинские изделия перед их стерилизацией и (или) дезинфекции с целью удаления белковых, жировых, механических загрязнений, а также лекарственных препаратов. Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очистке в разобранном виде.

1)      ополаскивание проточной водой  - 0,5 мин;

2)      замачивание в моющем комплексе при полном погружении изделия – 15 мин при t=50ºС.

3)      мойка каждого изделия при помощи ерша, ватно-марлевого тампона или щетки в моющем комплексе – 0,5 мин;

4)      ополаскивание проточной  водой, применение «Биолота» - 3 мин, при применении «Астры»,  «Айны»,  «Лотоса» - 10 мин;

5)      ополаскивание дистиллированной водой – 0,5 мин;

6)      сушка горячим воздухом при t=80-85ºС до полного исчезновения влаги.

 

Приготовление 0,5% моющего р-ра (для предстерилизационной очистки):

1.      Из 30% пергидроля = 20 мл 30% пергидроля + 5 гр СМС (прогресс, Лотос, Астра, Новость) + 975 мл воды, р-р допустимо использовать в течение 1 суток, подогревая не более 6 раз до изменения цвета.

2.      Из препарата «Биолот»: 5 гр сухого в-ва развести водой до 1 л р-ра, р-р использовать однократно, готовить непосредственно перед использованием.

В случае проведения дезинфекции изделий медицинского назначения (исключая клизменные наконечники) нейтральным анолитом с концентрацией активного хлора 0,03% предстерилизационная очистка может быть совмещена с дезинфекцией.

В настоящее время широко применяются новые средства, совмещающие дезинфекцию и мойку. Они применяются в соответствии с инструкцией.

Контроль качества предстерилизационной обработки инструментария.

Предстерилизационную очистку считают эффективной, если на изделиях после обработки не обнаружены с помощью   азопирамовой пробы остаточные количества крови.

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят 1 раз в квартал санэпидслужбой.

Самоконтроль в ЛПУ проводится не реже 1 раза в неделю, организуется и контролируется старшей сестрой отделения. Контролю подвергаются 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3.5 единиц.

Кроме того, качество отмывки от СМС и от лекарственных препаратов проверяется фенолфталеиновой пробой. Приказ МЗ СССР № 408 от 12.07.98 г.

Азопирамовая проба

ЦЕЛЬ: контроль предстерилизационной очистки

ПОКАЗАНИЯ:

·        в централизованной стерилизационной – ежедневно

·        самоконтроль на отделении – 1 раз в неделю

·        центр санэпиднадзора контролирует ЛПУ – 1 раз в квартал

НЕОБХОДИМЫЕ УСЛОВИЯ:

·        1% изделий одного наименования, но не менее 3-5 штук

·        исходный раствор азопирама, приготовленный аптекой

·        3% перекись водорода

·        марлевая салфетка

·        стекла с мазками крови

·        журнал учета результатов контроля предстерилизационной очистки

ПРОЦЕСС

ОБОСНОВАНИЕ

1.      приготовить рабочий раствор азопирама смешивая равные объемы (1-1)исходного раствора азопирама и 3% перекиси водорода, рабочий раствор пригоден к употреблению только в течение 1-2 часов 2.      проверить активность рабочего раствора, капнув несколько капель на стекло с мазком крови 3.      холодные изделия (не выше 25 градусов) протереть тампоном, смоченным реактивом или нанести 3-4 капли рабочего раствора пипеткой в шприц и несколько раз подвигать реактив поршнем 4.      экспозиция 0,5-1 минута 5.      раствор из шприца вытеснить на марлевую салфетку или гладкое изделие протереть марлевой салфеткой 6.      чтение пробы: ·        розово-сиреневое окрашивание появляется при наличии на изделии гемоглобина ·        буроватое окрашивание – при наличии окислителей, хлорамина, хлорной извести, стирального порошка, отбеливателей, ржавчины 7. независимо от результата пробы изделие промыть водой или спиртом 8. при положительной пробе вся партия изделий подлежит повторной очистке 9. результаты пробы записать в журнал учета

·        контроль пригодности и активности рабочего раствора ·        при более высокой температуре реактив разрушается ·        обеспечить проникновение рабочего раствора в места соединения ·        если изменение цвета позже, чем через 1 минуту, проба не засчитывается ·        оценка результатов           ·        удаление токсических веществ   ·        учет и преемственность

 

Дезинфекция помещений, предметов обстановки процедурного кабинета.

2-кратное протирание ветошью, смоченной в растворе:

1)      хлорамин Б – 1% р-р с моющим средством;

2)      перекись водорода – 3% р-р с моющем средством.

Обработка ветоши.

1.      Погружение в один из растворов на 60 мин перед использованием:

а) хлорамин Б 1: р-р;

б) гипохлорид Са 0,5% р-р.

2.      Кипячение в 2% содовом растворе – 15 мин.

Приказ МЗ СССР № 720 от 31.07.78 г.

Если предметы обстановки или ветошь испачканы кровью, следует немедленно перейти на режим обработки по приказу № 408 с использованием 3% р-ра хлорамина.

Уборка процедурного кабинета.

§         Текущая уборка процедурного кабинета проводится 2 раза в день с применением 1% р-ра хлорамина или другого дезинфиканта с 0,5 СМС.

§         УФ-облучение и проветривание 4 раза в день по 15-20 минут (после уборки в процессе работы облучать ультрафиолетовыми стационарными или передвижными лампами из расчета 1 Вт мощности на 1 м² помещения).

§         Генеральная уборка проводится 1 раз в неделю с применением одного из следующих растворов:

-         5% р-р хлорамина 

-         6% р-р перекиси водорода с 0,5% р-ром моющего средства

-         1% р-р активированного хлорамина (100 гр хлорамина на 10 л воды + 40 гр нашатырного спирта) с тщательным мытьем стен, полов, всего оборудования

-         1%, 3% р-р амоцида

После дезинфекции процедурного кабинета его облучают ультрафиолетовым светом, включая настенные бактерицидные облучатели ОБН-200 или ОБН-350, один облучатель на 30 м³ помещения на 2 часа.

Приказ МЗ СССР № 720 п.5.20  от 31.07.78 г.   

        

 Использование медицинских перчаток

ЦЕЛЬ: создание барьера, препятствующего распространению и передаче инфекции от пациента персоналу и от персонала пациенту. Обеспечение высокого уровня чистоты и гигиены. Охрана здоровья персонала.

ПОКАЗАНИЯ:

·      При асептических процедурах

·      Во всех случаях возможного контакта с кровью, другими биологическими жидкостями или инфицированными поверхностями, предметами

·      При возможном контакте с химическими веществами: моющими средствами, дезинфекционными средствами.

ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ – гнойничковое или другое поражение кожи, трещины, раны

НЕОБХОДИМЫЕ УСЛОВИЯ:

·      Достаточное количество перчаток стерильных и нестерильных, разовых и многократного применения

·      Смена перчаток после каждого пациента

ПРОЦЕСС

ОБОСНОВАНИЕ

1.      Вымыть руки стандартным способом 2.      Выбрать перчатки в зависимости от предстоящей процедуры (стерильные или нестерильные) 3.      Стерильные перчатки достать стерильным пинцетом из бикса или вскрыть верхнюю упаковку на разовых стерильных перчатках и достать пинцетом перчатки во внутренней упаковке 4.      Расположить перчатки на отдельном столике на стерильной пеленке 5.      Отвернуть стерильным пинцетом верхние края стандартной упаковки, в которой перчатки лежат ладонной поверхностью кверху, а края перчаток отвернуты кнаружи в виде манжет 6.      Большим и указательным пальцем правой руки захватить изнутри отвернутый край левой перчатки и осторожно натянуть ее на левую руку 7.      Пальцы левой руки(одетой в перчатку) подвести под отворот тыльной поверхности правой перчатки и натянуть ее на правую руку ·        Не меняя положения пальцев, отвернуть загнутый край перчатки ·        Так же отвернуть край левой перчатки 8.      Руки в стерильных перчатках следует держать согнутыми в локтевых суставах и приподнятыми вперед на уровне выше пояса 9.      В случае повреждения перчатки необходимо сменить 10.  Перчатки необходимо менять (а не мыть), завершив процедуру, между контактами с пациентами или после контакта с загрязненными предметами 11.  При снятии перчаток: ·        Пальцами левой руки в перчатке захватить поверхность края правой перчатки и энергичным движением ·        Снять ее, выворачивая наизнанку ·        Большой палец правой руки (без перчатки) завести внутрь левой перчатки и захватив внутреннюю поверхность энергичным движением снять перчатку с левой руки, выворачивая ее наизнанку 12. использованные перчатки опустить в емкость для последующей обработки.

·        Удаление бытовой грязи, временных микроорганизмов, продуктов жизнедеятельности кожи ·        Перчатки уменьшают степень загрязнения рук ·        Сохранить стерильность перчаток ·        Правильная упаковка сводит к минимуму риск нарушения стерильности перчаток ·        Касаясь только внутренней поверхности перчатки, сохранить ее стерильность и не нарушить целостность при надевании перчаток ·        Протирание спиртом снимает тальк ·        Если руки опустить ниже уровня пояса, они считаются расстерилизованными ·        При повреждении перчаток возможно инфицирование кожи медсестры кровью или другими биологическими жидкостями пациента, а перчаточный сок (накопившийся пот) может инфицировать пациента ·        Смена перчаток уменьшает риск перекрестного заражения ·        При мытье перчаток дезинфектантами возможно их повреждение ·        При мытье перчаток повышается увлажнение внутри перчаток, усиливается рост микроорганизмов во влажной среде и увеличивается риск перекрестной инфекции ·        При снятии перчаток касание к наружной поверхности использованных перчаток вызывает инфицирование кожи медсестры ·        Обработка использованных перчаток уменьшает загрязнение окружающей среды микроорганизмами.

 

Укладка стерилизационных коробок

ЦЕЛЬ: обеспечение условий для стерилизации, хранения и пользования изделий медицинского назначения

ПОКАЗАНИЯ: подготовка к стерилизации – упаковка перевязочного материала, белья, изделий медицинского назначения из металла, стекла и резины

НЕОБХОДИМЫЕ УСЛОВИЯ:

·      Коробки стерилизационные (КС) – биксы разной емкости и формы

·      Коробки стерилизационные с фильтром (КФ) – биксы разной емкости и формы

·      Целое чистое операционное белье (простыни, полотенца, халаты и т.д.)

·      Перевязочный материал (салфетки, турунды, ватные шарики и т.д.)

·      Изделия медицинского назначения (инструменты, шприцы, перчатки и т.д.), прошедшие дезинфекцию и предстерилизационную очистку

·      Дезинфицирующие средства, разрешенные к применению в установленном законом порядке

ПРОЦЕСС

ОБОСНОВАНИЕ

1.проверить исправность бикса 2.подготовить стерилизационный материал к укладке в соответствии с нормами загрузки биксов 3.определить вид укладки и подготовить соответственно для: ·        Видовой укладки – материалы или инструменты одного вида ·        Целевой укладки – материал или инструменты для одной процедуры ·        Универсальной укладки – все необходимое для накрывания стерильного стола или для работы в течение дня в процедурном кабинете 4. выстелить бикс изнутри полотняной салфеткой 5. уложить материалы или изделия: ·        Вертикально ·        Рыхло ·        Послойно и секторально 6.положить индикатор стерилизации в зависимости от температурного режима, применяемого для данного вида изделий 7.уложенный материал накрыть салфеткой, выстилающей бикс 8.закрыть бикс 9.к ручке прикрепить бирку с указанием названия отделения и кабинета, вида стерилизуемого материала, даты укладки, фамилия и подпись лица производившего укладку 10.доставка бикса в ЦСО осуществляется в плотном влагостойком мешке, подлежащем стерилизации и используемом для эффективной обратной транспортировки бикса из ЦСО

·        Обеспечение герметичности после стерилизации ·        Уничтожение вегетативных форм микробов для более эффективной стерилизации ·        Загрузка бикса проводится по весу или количеству изделий в зависимости от объема бикса для обеспечения эффективности стерилизации ·        Вид укладки зависит от профиля и объема работы медсестры для эффективной организации труда ·        Пеленка, выстилающая бикс изнутри, создает дополнительный барьер для проникновения микроорганизмов ·        Рыхлая укладка обеспечивает проникновение пара при стерилизации, вертикальная и послойная дает возможность найти нужное, не нарушив порядок ·        Контроль стерилизации, т.к. только при достижении определенной температуры индикатор меняет свой цвет, а порошкообразный – расплавляется ·        Необходимая информация для обеспечения преемственности при работе с биксом, личная ответственность ·        Предупреждение дополнительного инфицирования из окружающей среды.

 

Накрывание стерильного столика/лотка в процедурном кабинете

ЦЕЛЬ: сохранение стерильности инструментов и перевязочного материала, обеспечение асептики

ПОКАЗАНИЯ:

·        Асептические процедуры (пункции вены, инфузии, люмбальная, стернальная пункция и др.)

·        Осмотр стерильными инструментами

·        Малые операции

НЕОБХОДИМЫЕ УСЛОВИЯ:

·        Манипуляционный столик, обработанный дезинфицирующими средствами, разрешенными к применению в установленном законом порядке

·        Биксы на подставке со стерильными материалами и бельем без дыр

·        Стерильные «инструменты захвата» (большой пинцет, корнцанг)

·        Спиртсодержащий кожный антисептик

·        Стерильные инструменты без упаковки на сетке в воздушном стерилизаторе или в стерильных упаковках

 

 

ПРОЦЕСС

ОБОСНОВАНИЕ

1.надеть шапочку, маску, халат 2.обратить внимание на герметичность бикса и дату стерилизации на бирке бикса 3.вымыть руки стандартным способом 4.вытереть стерильной салфеткой 5.обработать руки спиртсодержащим кожным антисептиком 6.надеть стерильный халат 7.надеть стерильные перчатки 8.открыть крышку бикса со стерильным бельем, нажав на педаль подставки с биксом, проверить индикатор стерилизации 9.достать простыню, сложенную в 4 слоя, накрыть ею верхнюю поверхность передвижного столика так, чтобы она свисала на 15-20 см ниже поверхности стола 10.два ее верхних слоя захватить большими стерильными пинцетами (инструментами захвата)и отвернуть от себя, сложив «гармошкой» на задней поверхности стола 11.при помощи стерильной пеленки извлечь сетку с инструментами, стерилизовавшимися в открытом виде, из воздушного стерилизатора и поставить на стерильный стол, разложив их в принятом порядке или достать из бикса стерильные укладки с наборами перевязочного материала, шариков, салфеток, инструментов и разложить их на столике 12.стерильными цапками захватить два верхних слоя простыни, лежащей на задней поверхности столика, и накрыть инструменты, чтобы края простыни с цапками свисали вниз 13.прикрепить бирку с датой 14.все предметы со стерильного стола берутся стерильными корнцангами/пинцетами 15.сборка стерильных шприцев производится на столике с помощью двух стерильных пинцетов бесконтактным методом 16.срок сохранения стерильности инструментов, перевязочных материалов, белья на стерильном столе – 6 часов.

·        Создание барьера для микроорганизмов, предупреждение их попадания на рабочие поверхности стерильного стола ·        Механическое удаление бытовой грязи и транзиторной микрофлоры с кожи ·        Частичное уничтожение резидентныхмикроорганизмов, находящихся на коже рук ·        Создание защитного барьера для профилактики перекрестной инфекции ·        Предупреждение инфицирования перчаток и защитной одежды при открывании бикса, контроль соблюдения режима стерилизации ·        Стерильные сухие простыни создают барьер для проникновения микроорганизмов из окружающей среды ·        На гладкой холодной сухой и продезинфицированной поверхности передвижного столика микроорганизмы легко уничтожаются и медленно размножаются ·        Стерильная пеленка предупреждает инфицирование и защитной одежды медсестры, и стерильной сетки с инструментами при их извлечении ·        При строго определенном порядке раскладывания инструментов у медсестры вырабатывается навык быстрого и правильного их применения ·        Создание барьера для предупреждения инфицирования инструментов из окружающей среды ·        Сохранение стерильности и предупреждение инфицирования обеспечивается при бесконтактном способе их применения.

Аналогичным способом накрывается кювета для выполнения асептических процедур в палате или боксе.

 

Стерилизация изделий медицинского назначения

ЦЕЛЬ: профилактика внутрибольничного инфицирования пациентов и профессионального инфицирования персонала. Удаление всех видов микроорганизмов и спор.

ПОКАЗАНИЯ:

·        Критические предметы – изделия медицинского назначения, хирургические инструменты, шприцы, иглы, кардиологические и уринарные катетеры и другие предметы, проникающие в стерильные ткани тела или сосудистую систему

·        Полукритические предметы – отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение

МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ:

·                Воздушный метод – изделия из металла, стекла и силиконовой резины (режим 180 град. – 60 мин., 160 град. – 150 мин.)

·                Паровой метод – изделия из металла, стекла, текстильных материалов (режим 2 атм, 132 градуса, 20 мин.)

-резиновые перчатки, изделия из резины и полимеров(режим 1,1 атм. 120 градусов, 45 минут)

·                Химический метод – хирургические инструменты, шприцы, иглы, резиновые перчатки и другие изделия из металла, стекла, резины (погружение в стерилизующие средства в соответствии с методическими указаниями по их применению).

НЕОБХОДИМЫЕ УСЛОВИЯ

·                  Централизованная стерилизационная

·                  Паровые стерилизаторы, воздушные стерилизаторы

·                  Стерилизующие средства

·                  Индикаторы стерилизации

·                  Сухие очищенные изделия медицинского назначения

·                  Вентилируемое помещение

·                  Специально обученный мед. персонал

·                  Защитная одежда: халат или комбинезон, шапочка, маска-респиратор, защитные очки, влагостойкий фартук, перчатки из плотной резины, сменная обувь

·                  Вид и режим стерилизации выбирают в зависимости от вида стерилизуемого изделия и от клинической ситуации

ПРОЦЕСС

ОБОСНОВАНИЕ

1.      одеть защитную одежду 2.      осуществить дезинфекцию всех использованных изделий мед. назначения 3.      промыть проточной водой до исчезновения запаха 4.      осуществить предстерилизационную очистку 5.      промыть проточной водой 6.      прополоскать дистиллированной водой 7.      просушить изделия 8.      упаковать 9.      выбрать вид стерилизации 10.  при химической изделия поместить в емкости со стерилянтами и плотно закрыть крышками 11.  сухие изделия на сетке или в упаковке поместить в стерилизаторы в соответствии с нормами загрузки 12.  индикаторы стерилизации разместить в паровом стерилизаторе в 2 точках  1 тест у задней стенки и 2 тест у загрузочной двери, и по одному тесту в бязевой упаковке на нитке, в каждый бикс, а в сухожаровом шкафу или при воздушном методе стерилизации с камерой до 80 ТП-20; ТП-40; ШСС-80; 5 тестов с удалением от  боковых стенок на 5см. 13.  выдержать соответствующий режим при каждом виде стерилизации 14.  по окончании термической стерилизации проверить индикаторы на соответствие эталону 15.  выгрузить стерильные изделия в стерильной зоне 16.  по окончании химической стерилизации изделия промыть стерильной водой и использовать или произвести упаковку в асептических условиях для последующего хранения 17.  заполнить журнал учета работы стерилизаторов

·        озрана здоровья персонала ·        удаление биологических загрязнений, крови, слизи, уничтожение вегетативных форм микроорганизмов ·        удаление дезинфицирующих средств ·        удаление органических загрязнений, остатков лекарств, жира ·        удаление остатков моющих средств ·        обессоливание и обеспечение химически чистой поверхности ·        во влажной среде увеличивается рост и размножение микроорганизмов ·        способ и режим стерилизации в зависимости от материала изделия ·        предотвратить действие стерилянта на организм персонала ·        нормы загрузки важны для эффективности стерилизации ·        химический контроль стерилизации ·        соблюдение режима стерилизации необходимо для достижения наибольшего эффекта ·        контроль режима стерилизации ·        сохранение стерильности         ·       удаление стерилизующих веществ для профилактики токсического действия на здоровье ·       сохранение стерильности ·       учет и преемственность

 

СРОК ХРАНЕНИЯ СТЕРИЛЬНОГО ИЗДЕЛИЯ:

·        в асептических условиях без упаковки – 6 часов

·        в стерильной емкости (стерилизационная коробка), выложенной стерильной простыней – 3 суток

·        в двухслойной бязевой упаковке – 3 суток

·        в коробке стерилизационной без фильтра – 3 суток

·        в пергаменте, бумаге мешотчатой влагостойкой – 3 суток

·        в бумаге упаковочной высокопрочной – 3 суток

·        в стерилизационных коробках с фильтром – 20 суток

·        в двухслойной мягкой упаковке из бумаги крепированной для медицинских целей (Литва) – 20 суток

·        в двухслойной мягкой упаковке из бумаги крепированной для медицинских целей «стерикинг» (Финляндия) – 20 суток

·        в бумажном пакете «Стерикинг» (Финляндия), закрытом герметичным термошвом – 20 суток

·        в однослойном прозрачном или комбинированном пакете «Стерикинг» - закрытым герметичным термошвом – 1 год

·        в двухслойном (пакет-футляр+упаковка) прозрачном или комбинированном пакете «стерикинг» (Финляндия)закрытом герметичным термошвом – до 5 лет.

 

 

Экспертная карта наблюдения и оценки санитарно-противоэпидемического режима в процедурном кабинете.

Ф.И.О. сотрудника____________________________________________

Квалификационная категория___________________________________

Оценка показателей:

2 балла – полное соответствие стандарту деятельности

1 балл – частичное соответствие

0 баллов – грубые нарушения или невыполнение

ПОКАЗАТЕЛИ / ДАТА
Организация рабочего места ·        Площадь кабинета ·        Освещенность ·        Облицовка ·        Секционная мойка ·        Локтевой или педальный кран ·        Достаточность оборудования ·        Рациональность размещения ·        Достаточность оснащения ·        Зональность-стерильная зона ·        Рабочая ·        Хозяйственная ·        Исключение перекреста чистого и грязного потока ·        Хранение медикаментов ·        Хранение уборочного инвентаря СРЕДНИЙ БАЛЛ______________ Личная гигиена М/С ·        Адекватность мед. Формы – халат ·        Шапочка ·        Маска, очки ·        Влагостойкий фартук ·        Состояние рук (ногти, украшения) ·        Адекватность применения перчаток ·        Сменная обувь СРЕДНИЙ БАЛЛ_______________ Консультирование пациента ·        Перед процедурой ·        Во время процедуры ·        После процедуры СРЕДНИЙ БАЛЛ______________ Асептика ·        Обработка рук перед стерильной процедурой ·        Перед нестерильной процедурой ·        При инфекционном контакте ·        Пользование индивидуальным полотенцем, стерильной салфеткой ·        Надевание стерильного халата ·        Надевание стерильных перчаток ·        Пользование стерильным биксом ·        Накрывание стерильного стола ·        Индивидуального стерильного лотка ·        Работа со стерильного лотка ·        Работа со стерильного стола ·        Пользование инструментами захвата ·        Обработка флаконов ·        Заполнение систем в/в ·        Обработка места инъекции ·        Техника манипуляций ·        Снимание халата, перчаток ·        Обработка рук после процедуры СРЕДНИЙ БАЛЛ_______________ Дезинфекция и стерилизация изделий мед. Назначения ·        Защитная одежда мед. Работника ·        Отмывание в накопителе ·        Дезинфекция ·        Промывание водой ·        Предстерилизационная очистка ·        Промывание водой ·        Обессоливание в дистиллированной воде ·        Подсушивание ·        Упаковка ·        Стерилизация ·        Контроль очистки азопирамом ·        Контроль стерилизации ·        Обработка инструментов разового пользования СРЕДНИЙ БАЛЛ_______________ Уборка помещений ·        Защитная одежда персонала ·        Режимы ·        Средства ·        Метод двух ведер ·        Кварцевание ·        Проветривание СРЕДНИЙ БАЛЛ_________________ Генеральная уборка ·        Еженедельно ·        Защитная одежда персонала ·        Средства ·        Режимы ·        Последовательность обработки оборудования и помещения ·        Кварцевание ·        Проветривание СРЕДНИЙ БАЛЛ_________________ Результаты смывов Регистрация внутрибольничных инфекций Зачет по СЭР в санитарной книжке

ОБЩИЙ СРЕДНИЙ БАЛЛ_____________________________

Критерии оценки деятельности:»отлично», если средний балл от 1,8 до 2,0

«хорошо», если средний балл от 1,6 до 1,79

«удовлетворительно», при оценке от 1,4 до 1,59

«неудовлетворительно» - ниже 1,4

ВЫЯВЛЕННЫЕ ПРОБЛЕМЫ:

1.      

2.      

ВЫВОДЫ (есть ли риск возникновения внутрибольничных инфекций (гнойно-септических, гепатитаВ, ВИЧ-инфекции и т.д.):

РЕКОМЕНДАЦИИ:

1.      

2.       

Дата                                Подпись сотрудника                    Подпись эксперта

 

 

 ДОВРАЧЕБНАЯ ПОМОЩЬ

 ПРИ НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЯХ

 В ПРАКТИКЕ ПРОЦЕДУРНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ СЕСТРЫ

 

БРОНХИАЛЬНАЯ АСТМА

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить бронхиальную астму.

·        Больной страдает бронхиальной астмой.

·        Удушье, одышка, выдох затруднен, сухие свистящие хрипы, слышные на расстоянии или при аускультации легких, участие в дыхании вспомогательной мускулатуры.

·        Вынужденное положение – сидя или стоя с опорой на руки.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Успокоить пациента. 3.      Усадить с упором на руки, расстегнуть стесняющую одежду. 4.      Измерить АД, подсчитать частоту пульса и частоту дыхательных движений. 5.      Сделать 1-2 вдоха из ингалятора, которым обычно пользуется больной. 6.      Дать 30-40% увлажненный кислород. 7.      Дать горячее питье, сделать горячие ножные и ручные ванны.	Уменьшить эмоциональное напряжение. Уменьшить гипоксию.   Контроль состояния пациента.   Устранение бронхоспазма.   Уменьшить гипоксию. Уменьшить бронхоспазм.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для внутреннего введения, шприцы, жгут, мешок Амбу.

Оценка достигнутого:

·        Уменьшить одышки; свободное отхождение мокроты, уменьшение хрипов в легких.

 

ЛЕГОЧНОЕ КРОВОТЕЧЕНИЕ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить легочное кровотечение.

·        Больной страдает заболеванием легких, туберкулёзом.

·        Кожа бледная, влажная, тахикардия, возможно снижение АД, кашель с выделением алой пенисто крови.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Успокоить больного. 3.      Усадить удобно больного, дать полотенце, почкообразный тазик. 4.      Объяснить, что разговарить нельзя. 5.      Положить пузырь со льдом на грудную клетку.	Снятие эмоциональной нагрузки.     Профилактика аспирации, асфиксии. Уменьшить кровотечение.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для внутреннего вливания, жгут, все необходимое для определения группы крови.

Оценка достигнутого:

·        Уменьшение кашля, уменьшение количества крови в мокроте, стабилизация АД и частоты сердечных сокращений.

 

 

СТЕНОКАРДИЯ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить приступ стенокардии.

·        Больной страдает ИБС, стенокардией или перенес инфаркт миокарда.

·        Приступообразная боль за грудиной давящего, сжимающего характера, часто иррадиирующая в левую руку, плечо, лопатку, иногда нижнюю челюсть, эпигастральную область.

Тактика медицинской сестры.

Действия

Обоснования

1.      Вызвать врача. 2.      Успокоить, удобно усадить пациента.   3.      Измерить АД, подсчитать частоту сердечных сокращений. 4.      Дать нитроглицерин таб. 0,0005 гр. или аэрозоль (1 нажатие) под язык, повторный прием препарата при отсутствии эффекта через 3 минуты повторить 3 раза под контролем АД и ЧСС. 5.      Дать корвалол или валокордин (25-35 капель), или настойку валерианы 25 капель. 6.      Поставить горчичники  на область  сердца. 7.      Дать 100% увлажненный кислород. 8.      Контроль пульса и АД. 9.      Снять ЭКГ. 10.  Дать при сохранении болей внутрь 0,25 гр. Аспирина, немедленно разжевать.

Уменьшение физической и эмоциональной нагрузки. Контроль состояния.   Снятие спазма коронарных артерий.         Снятие эмоциональной нагрузки.   С целью уменьшения боли, как отвлекающий фактор. Снижение гипоксии. Для контроля состояния. С целью уточнения диагноза. Предупреждение тромбообразования.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Шприцы и иглы для в/м и п/к инъекций.

·        Мешок Амбу, аппарат ЭКГ.

Оценка достигнутого:

·        Полное прекращение болевых ощущений.

 

ИНФАРКТ МИОКАРДА (типичная болевая форма)

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить инфаркт миокарда.

·        Больной страдает стенокардией.

·        Сильная загрудинная боль, часто с иррадиацией в левое (правое) плечо, предплечье, лопатки или шею, нижнюю челюсть, эпигастральную область.

·        Возможны удушье, одышка, нарушения сердечного ритма.

·        Прием нитроглицерина не устраняет боль.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызов врача. 2.      Соблюдать строгий постельный режим, успокоить пациента. 3.      Измерить АД и пульс. 4.      Дать нитроглицерин 0,5 мг сублингвально (до 3-х таблеток) с перерывом 5 минут. 5.      Дать 100% увлажненный кислород. 6.      Снять ЭКГ. 7.      Подключить к кардиомонитору.	Уменьшение физической и эмоциональной нагрузки. Контроль состояния. Уменьшение спазма коронарных артерий.   Уменьшение гипоксии. Для подтверждения диагноза. Для наблюдения за динамикой развития инфаркта миокарда.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        По назначению врача: фентанил (амп.), дроперидол, промедол (амп.).

·        Систему для внутреннего введения, жгут.

·        Электрокардиограф, дефибриллятор, кардиомонитор, мешок Амбу.

Оценка достигнутого:

·        Состояние пациента не ухудшилось.

 

КАРДИОГЕННЫЙ ШОК

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить кардиогенный шок на фоне инфаркта миокарда.

·        У больного с острым инфарктом миокарда появилась резкая слабость, кожа бледная, влажная, «мраморная», вены спали, кисти и стопы холодные.

·        АД низкое, систолическое около 90 мм.рт.ст. или ниже.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Уложить пациента, опустить головной конец кровати, приподнять ножной на 20º. 3.      Измерить АД, подсчитать пульс. 4.      Дать 100% увлажненный кислород. 5.      Сделать ЭКГ, подключить к кардиомонитору.	Увеличить приток крови к голове.     Контроль состояния. Уменьшение гипоксии. Контроль за состоянием.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для внутривенного вливания лекарственных средств, жгут.

·        Кардиомонитор, аппарат ЭКГ, пульсоксиметр, дефибриллятор, мешок Амбу.

Оценка достигнутого:

·        Состояние пациента не ухудшилось.

 

СЕРДЕЧНАЯ АСТМА, ОТЕК ЛЕГКИХ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить инфаркт миокарда.

·        У больного с заболеванием сердца и сердечной недостаточностью развивается приступ удушья, одышки, усиливающейся в положении лежа. Больной занимает вынужденное положение (садится). Отмечаются  акроцианоз, тахикардия, влажные хрипы в легких (иногда слышны на расстоянии), тахипное. В тяжелых случаях отхождение пенистой мокроты

Тактика медицинской сестры.

Действия

Обоснования

1.      Вызов врача. 2.      Усадить удобно (без напряжения) пациента с опущенными с кровати ногами, успокоить. 3.      Измерить АД, пульс, частоту дыхания. 4.      Дать 1 таблетку нитроглицерина под язык, повторить через 5 минут под контролем АД и ЧСС, если систолическое АД выше 90 мм.рт.ст. 5.      Наложить венозные жгуты на обе конечности на 15-20 минут (снимать поочередно, постепенно) или сделать горячие ножные ванны. 6.      Дать 100% увлажненный кислород.

Снятие эмоционального напряжения,, разгрузка малого круга кровообращения.   Контроль состояния. Для улучшения питания мышцы сердца.       С целью разгрузки малого круга кровообращения.     Снижение гипоксии.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для внутривенного введения, жгут, электрокардиограф, дефибриллятор, кардиомонитор, пульсоксиметр, мешок Амбу.

Оценка достигнутого:

·        Уменьшение удушья, одышки, цианоза, количества влажных хрипов в легких, появилась возможность лечь.

 

АРИТМИЯ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить аритмию.

·        Больной жалуется на сердцебиение, перебои или «замирание» сердца, слабость, головокружение. В тяжелых случаях может быть обморок.

·        Пульс редкий (менее 60 ударов в минуту), очень частый (120 ударов в минуту) или нерегулярный.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Уложить и успокоить пациента.   3.      Измерить АД, подсчитать частоту сердечных сокращений. 4.      Зарегистрировать стандартную ЭКГ во ΙΙ отведении. Записать около 10 комплексов QRS. 5.      Подключить к кардиомонитору.	Снять физическое и эмоциональное напряжение. Контроль состояния.   С целью уточнения диагноза.     Контроль состояния.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Шприцы для в/в и в/м, п/к инъекций, жгут, дефибриллятор, электростимуляторы, мешок Амбу.

Оценка достигнутого:

·        Нормализация ЧСС и сердечного ритма.

 

ГИПЕРТЕНЗИВНЫЙ КРИЗ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить гипертензивный криз.

·        Сильная головная боль, «мушки» или пелена перед глазами, тошнота, рвота, нарушение координации.

·        АД, по сравнению с привычным для больного уровнем, значительно повышено.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Успокоить пациента. 3.      Уложить с высокоподнятым изголовьем, при рвоте повернуть голову набок. 4.      Измерить АД, частоту сердечных сокращений.	Снятие эмоциональной нагрузки. Профилактика  асфиксии.   Контроль состояния.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Аппарат для  измерения АД.

·        Шприцы, систему для внутреннего вливания, жгут.

Оценка достигнутого:

·        Уменьшение жалоб, постепенное (за 1-2 часа) снижение АД до обычного для больного значения.

 

ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОЕ КРОВОТЕЧЕНИЕ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить желудочно-кишечное кровотечение.

·        Тошнота, рвота, черный стул, слабость, головокружение.

·        Кожа бледная, влажная, рвотные массы цвета «кофейной гущи», пульс слабый, возможно снижение АД.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Успокоить и уложить больного, голову повернуть на бок. 3.      Пузырь со льдом на эпигастральную область. 4.      Запретить пить, есть, разговаривать. 5.      Измерить АД и ЧСС.	Снятие эмоциональной и физической нагрузки. Уменьшение кровотечения.   Уменьшение кровотечения. Контроль состояния.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для внутреннего вливания, шприцы, жгут.

·        Все необходимое для определения группы крови и резус-фактора.

Оценка достигнутого:

·        Прекращение рвоты, стабилизация АД и ЧСС.

 

ГИПОГЛИКЕМИЧЕКАЯ КОМА

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить гипогликемию у пациента с сахарным диабетом  (гипогликемическое состояние и кома развиваются после инъекции инсулина, при невозможности современного поесть):

Гипогликемическое состояние:

·        Слабость, тревога, бледность, дрожь в руках, потливость, чувство голода, тахикардия, головная боль. В тяжелых случаях – возбуждение, дезориентации или оглушенность.

Гипогликемическую кому:

·        Внезапная потеря сознания, гипертонус мышц, выраженная потливость, могут быть судороги, в крови уровень сахара меньше 3,3 ммоль/л (60 мг%).

Тактика медицинской сестры.

№ п/п	Действия	Обоснования
1 2     3 4 5   1 2   3   4	Гипогликемическое состояние Зафиксировать время Дать пациенту съесть не менее 5 кусков сахара или выпить теплый чай. Если нет сладкого, то дать булку, хлеб, печенье. Психологически успокоить пациента. Вызвать лаборанта. Сообщить врачу. Гипогликемическая кома Зафиксировать время. Обеспечить вызов врача, лаборанта.   Придать пациенту устойчивое боковое положение. Произвести ревизию ротовой полости.	Для повышения уровня сахара в крови.     Уменьшение эмоционального напряжения. Для определения уровня сахара в крови. Необходимость врачебной помощи.     Необходимость врачебной помощи срочного определения уровня сахара в крови. Профилактика аспирации.   Для извлечения остатков пищи, предотвращения асфиксии.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Система  для внутривенного капельного вливания, шприцы, иглы, жгут.

·        40% р-р глюкозы.

·        0,9% р-р хлорида натрия.

 

Гипергликемическая кома (диабетическая)

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить гипергликемическую кому.

·        Наличие «паспорта» диабетика, инсулинового шприца или шприца-ручки.

·        Известно, что пациент страдает сахарным диабетом. Пациент без сознания,  дыхание редкое, глубокое, шумное (Куссмауля), запах ацетона изо рта.

·        Кожные покровы сухие, мышечный тонус снижен, глазные яблоки мягкие, узкий зрачок, потеря веса.

Тактика медицинской сестры.

№ п/п	Действия	Обоснования
1 2   3   4 5*	Зафиксировать время. Обеспечить вызов врача, лаборанта.   Придать устойчивое боковое положение.   Контроль пульса, АД, ЧДД. Определить уровень сахара в крови из пальца портативным глюкометром.	Необходимость врачебной помощи, проведения срочных анализов крови. Профилактика западения языка, аспирации, асфиксии. Оценка состояния. Определение уровня сахара в крови.

 

*Определение производится при наличии глюкометра на отделении.

 

Подготовка медикаментов, аппаратуры и инструментария:

·        Система для внутривенного капельного вливания.

·        Шприцы.

·        Инулин простой (актропид).

 

 

ОТЕК КВИНКЕ (отек гортани)

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить отек Квинке и отек гортани.

·        У пострадавшего внезапно появился нарастающий отек в области губ, век, шеи.

·        Осиплость голоса, нарастающая смешанная одышка, свистящее дыхание.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Успокоить пациента.   3.      Обеспечить доступ свежего воздуха. Дать 100% увлажненный кислород. 4.      Закапать в нос сосудосуживающие капли (нафтизин, санорин, глазолин).	Снятие эмоциональной и физической нагрузки. Уменьшение гипоксии.   Уменьшить отек слизистой оболочки носоглотки, облегчения дыхания.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для внутреннего вливания, жгут, шприцы, иглы, мешок Амбу, иглу Дюфо большого диаметра или коникотом, набор для трахеостомии, ларингоскоп, набор для интубации, пульсометр. 

Оценка достигнутого:

·        Уменьшение отека, нормализация отека.

 

АНАФИЛАКТИЧЕСКИЙ ШОК

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить анафилактический шок.

·        На фоне или сразу после вливания лекарственного препарата, сыворотки, укуса насекомого и т.д. появилась слабость, головокружение, затруднение дыхания, чувство нехватки воздуха, беспокойство, чувство жара во всем теле иногда рвота.

·        Кожа бледная, холодная, влажная, дыхание частое, поверхностное. Систолическое давление 90 мм.рт.ст. или ниже. В тяжелых случаях угнетения сознания и дыхания.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Обеспечить вызов врача.   2.      Если анафилактический шок развился на внутривенное введение лекарственного препарата, то: 2.1     Прекратить введение препарата, сохранить венозный доступ. 2.2     Придать устойчивое боковое положение, вынуть зубные протезы. 2.3     Приподнять ножной конец кровати. 2.4     Дать 100% увлажненный кислород. 2.5     Измерить АД и ЧСС.	Для определения дальнейшей тактики оказания врачебной помощи.       Снижение дозы аллергена.   Профилактика асфиксии.   Улучшение кровоснабжения мозга. Снижение гипоксии. Контроль состояния.
1.      При внутримышечном введении: -         Прекратить введение препарата; -         Положить пузырь со льдом на место инъекции; -         Обеспечить внутривенный доступ; -         Повторить этапы стандарта с 2.2 по 2.4 при внутривенном введении.	Замедление всасывания аппарата.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для внутреннего вливания, шприцы и иглы для в/м и п/к инъекций, жгут, аппарат ИВЛ, пульсометр, поликотом, набор для интубации трахеи, мешок Амбу.

·        Стандартный набор препаратов «Анафилактический шок».

Оценка достигнутого:

·        Восстановление сознания, стабилизация АД, сердечного ритма.

 

 

КОЛЛАПС

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить неотложное состояние.

·        Резкая слабость.

·        Кожные покровы бледные, губы цианотичные, конечности холодные.

·        АД низкое (систолическое АД 70 мм.рт.ст. или ниже).

·        Пульс нитевидный.

·        Часто нарушение сознания.

·        Состояние может возникнуть при резком снижении температуры, резкой перемене положения тела (вставание) и др.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать скорую помощь.   2.      Уложить без подушки с приподнятыми ногами, обеспечить приток свежего воздуха. Измерить АД.	Состояние требует оказания врачебной помощи. Улучшить приток крови к мозгу.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Шприцы, иглы, жгут.

Оценка достигнутого:

·        Самочувствие улучшилось.

·        Состояние не улучшилось – быть готовым для СЛР.

 

ОСТРАЯ ДЫХАТЕЛЬНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить неотложное состояние.

·        Затрудненное шумное дыхание.

·        Участие в дыхании вспомогательной мускулатуры.

·        Периоральный цианоз.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать неотложную помощь. 2.      Попытаться разобраться в причине возникновения состояния. 3.      Возвышенное положение; расстегнуть одежду, маленького ребенка взять на руки. Осмотреть, освободить верхние дыхательные пути (отсосать слизь, рвотные массы). 4.      Доступ свежего воздуха, подача кислорода.	Оказание помощи по стандартам.   Улучшение проходимости верхних дыхательных путей.       Профилактика гипоксии.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Увлажненный кислород. Мешок Амбу, шприцы, иглы, жгут.

Оценка достигнутого:

·        Состояние без ухудшения  - продолжить ранее начатые мероприятия до приезда скорой помощи.

·        Состояние ухудшилось, остановка дыхания – действия по стандарту «Клиническая смерть».

 

НОСОВОЕ КРОВОТЕЧЕНИЕ

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить носовое кровотечение.

·        Наблюдается истечение алой не пенящейся крови из носовых отверстий и по задней стенки глотки.

·        Кожные покровы бледные, покрыты холодным потом, пульс частый, АД снижено.

Тактика медицинской сестры.

Действия

Обоснования

1.      Вызвать врача. 2.      Успокоить пациента. 3.      Усадить удобно, голову наклонить вперед, в руки дать почкообразный лоток. 4.      Остановить кровотечение с помощью: -         Введение в полость носа ватномарлевого тампона смоченного 3% р-ром перекиси водорода; -         Гемостатической губки; -         Наложение передней тампонады носа. 5.      Положить на переносицу и затылок пузырь со льдом. 6.      Измерить АД и частоту сердечных сокращений.

Снятие  эмоциональной нагрузки. Профилактика асфиксии.   Снижение кровопотери.           Сужение сосудов, уменьшение кровотечения.   Контроль состояния.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Систему для в/в вливаний, жгут, шприцы и иглы для в/м и п/к инъекций.

·        Набор для наружной и задней тампонады носа.

Оценка достигнутого:

·        Кровотечение прекратилось, состояние больного стабильное.

 

ЭПИЛЕПТИЧЕСКИЙ СТАТУС

Информация, позволяющая медицинской сестре заподозрить эпилептический статус.

·        Судорожные припадки следующие один за другим.

·        Отсутствие прояснения сознания между припадками.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснования
1.      Вызвать врача. 2.      Провести мероприятия по стандарту «Судорожный припадок». 3.      Предупредить западание языка, очистить полость рта от слюны и секрета в перерыве между припадками.	Профилактика асфиксии.

Подготовить аппаратуру и инструментарий:

·        Шприцы, иглы.

Оценка достигнутого:

·        Состояние улучшилось, припадки спали или совсем прекратились.

·        Состояние ухудшилось, наступила остановка дыхания – действовать по стандарту «Клиническая смерть».

 

СУДОРОЖНЫЙ ПРИПАДОК

Информация, позволяющая медсестре  начать осуществление доврачебной помощи

Судороги ,пена изо рта .

Оглушение ,прикус языка , непроизвольное мочеиспускание , рассказ о припадке очевидцев.

Тактика медицинской сестры.

Действия	Обоснование
1.      Подложить под голову подушку, шапку или что – нибудь иное , мягкое	Предупреждение травмы головы
2.      Обеспечит доступ воздуха ( расстегнуть ворот , ремень и т. п.)	Профилактика гипоксии
3. Повернуть пациента набок при рвоте	Предупредить аспирацию рвотными массами
4. Вызвать врача или скорую медицинскую помощь

Подготовить аппаратуру и инструментарий :

-         Шприцы и иглы.

Оценка достигнутого

-         Прекращение судорог, восстановление сознания и способности к движению и активным действиям.

 

 

ТЕХНОЛОГИЯ ПРОВЕДЕНИЯ НЕПРЯМОГО (ЗАКРЫТОГО) МАССАЖА СЕРДЦА

Производится с целью восстановить циркуляцию крови в организме, т.е. поддержать кровообращение в жизненно важных органах при остановке сердечной деятельности. Чем раньше массаж будет начат, тем скорее будет получен эффект. Необходимо помнить, что от момента остановки сердца до развития в головном мозге необратимых изменений проходит  очень короткий промежуток времени, исчисляемый 4 – 6 минутами. В течение этого времени и должны быть начаты реанимационные мероприятия.

Для успешного проведения непрямого массажа сердца пациента необходимо поместить на жесткую поверхность. Если остановка сердца наступила на койке с пружинным матрацем, то пациента надо положить на кровати так, чтобы грудной отдел позвоночника находился на твердом изгибе. Для этого верхнюю половину туловища смещают на край кровати; голова при этом будет свисать вниз. Медсестра должна встать сбоку от пациента и обнажить его грудную клетку.

Непрямой массаж сердца производится следующим образом. Левая ладонь помещается на нижнюю треть грудины, а правая кладется на левую. Обе руки должны быть выпрямлены, а плечевой пояс располагаться над грудной клеткой. Массаж  осуществляется  энергичными резкими надавливаниями на грудину; при этом грудина должна смещаться на 3 – 4 см к позвоночнику. Число надавливаний 50-60 в минуту.

Сердце сдавливается между грудиной и позвоночником, и кровь из желудочков выбрасывается в аорту и легочную артерию. При прекращении надавливания грудина поднимается, и сердце вновь наполняется кровь из полных вен. Таким образом   осуществляется искусственное кровообращение. Массаж следует продолжать до восстановления полноценной самостоятельной деятельности сердца, до появления отчетливого пульса и повышения  давления до 80-90 мм.рт.ст. Массаж сердца должен обязательно сопровождаться искусственной вентиляцией легких.

 

ТЕХНОЛОГИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ИСКУССТВЕННОГО ДЫХАНИЯ

Проводится с целью периодического замещения воздуха в легких при отсутствии или недостаточности естественной вентиляции. ИВЛ лучше выполнять с помощью ручных приборов: мешка Амбу, ДП-10, КАМА, РДА-1 и др.  При отсутствии респиратора нельзя терять минуты на его доставку, и необходимо сразу начать ИВЛ экспираторным способом.

Способ изо рта в рот. Эффективность при этом способе достигается максимальным запрокидыванием головы пациента назад. При этом корень языка и надгортанник смещаются вперед и открывают свободный доступ воздуха в гортань.

Стоя сбоку, медсестра одной рукой надавливает  запястьем на лоб пациента и запрокидывает его голову, а другую подкладывает под шею. В основе искусственной вентиляции легких лежит ритмичное вдувание воздуха из дыхательных путей медсестры в дыхательные пути пациента под положительным давлением. При проведении ИВЛ рот пациента должен быть постоянно открыт.

Способ изо рта в нос. Вдувание воздуха в дыхательные пути производится через нос: рот пациента при этом должен быть закрыт. Данный способ принципиально не отличается от описанного выше.

При наличии дыхательного меха (мешка Амбу) или маски ИВЛ лучше выполнять с их помощью, так как это улучшает физиологическую основу вентиляции – в дыхательные пути вводится воздух, обогащенный кислородом. При этом маска должен туго прижиматься вокруг носа и рта пациента.

 

ПЕРЕЧЕНЬ ИНСТРУКТИВНО-МЕТОДИЧЕСКИХ ДОКУМЕНТОВ

 ПО ВОПРОСАМ СТЕРИЛИЗАЦИИ И ДЕЗИНФЕКЦИИ

1.      СТ СЭВ 3188-81 “Изделия медицинского назначения. Методы, средства и режимы стерилизации и дезинфекции. Термины и определения”.

2.      ГОСТ 25375-82 “Методы, средства и режимы стерилизации и дезинфекции изделий медицинского назначения. Термины и определения ”.

3.      ОСТ 64-1-337-78 “Устойчивость медицинских металлических инструментов к средствам предстерилизационной очистки, стерилизации и дезинфекции. Классификация. Выбор метода”.

4.      Временная инструкция по стерилизации в упакованном виде пластмассовых магазинов одноразового использования для хирургических сшивающих аппаратов (утверждена Минздравом СССР 09.11.72 г. № 995-72).

5.      Методические рекомендации по стерилизации аппаратов искусственного кровообращения газообразной окисью этилена (утверждена Минздравом СССР 26.03.73 г № 1013-73).

6.      Временная инструкция по мойке и стерилизации хирургических инструментов и изделий из пластмасс перекисью водорода и смесью окиси этилена с бромистым метилом (утверждена Минздравом СССР 25.08.72 г. № 988-78).

7.      Методические указания по контролю паровых стерилизаторов (автоклавов) в лечебных учреждениях (типа “АВ”, “АГ”,  “АШ” и  “АОВ”) (утверждена Минздравом СССР 28.11.72 г. № 988-72).

8.      Методические рекомендации по стерилизации в портативном газовом аппарате (утверждена Минздравом СССР 26.03.72 г. № 1014-73).

9.      Методические указания по предстерилизационной обработке и стерилизации резиновых изделий и комплектующих деталей медицинского назначения (утверждены Минздравом СССР 29.06.76 г. № 1433).

10.  Методические указания по стерилизации в паровых стерилизаторах  перевязочного материала, хирургического белья, хирургических инструментов, резиновых перчаток, стеклянной посуды и шприцев (утверждены Минздравом СССР 12.08.80 г. № 28-4/6).

11.  Методические рекомендации по применению дезоксона-1 для дезинфекции и стерилизации (утверждены Минздравом СССР 24.12.80 г. № 28-15/6).

12.  Методические указания по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения (утверждены Минздравом СССР 08.06.82 г. № 28-6/13).

13.  Приказ Министерства здравоохранения СССР от 31 июля 1978 г. № 720 “Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией ”.

14.  Приказ Министерства здравоохранения СССР от 6 декабря 1979 г. № 1230 “О профилактике заболеваний в акушерских стационарах”.

15.  Приказ Министерства здравоохранения СССР от 4 августа 1983 г. № 916  “Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц (отделений)”.

16.  Методические указания по классификации  очагов туберкулезной инфекции, проведению и контролю качества дезинфекционных мероприятий при туберкулезе (утверждены Минздравом СССР 04.05.79 г. № 10-8/39).

17.  Методические указания по применению хлорамина для дезинфекционных целей (утверждены 21.10.75 г. № 1359 -75).

18.  Инструкция по использованию перекиси водорода с моющими средствами  для целей дезинфекции (утверждена Минздравом СССР 29.08.70 г. № 858-78).

19.  Методические указания по применению сульфохлорантина для целей дезинфекции (утверждены Минздравом СССР 23.06.77 г. № 1755-77).

20.  Методические указания по применению хлорцина для дезинфекции (утверждены Минздравом СССР от 24.12.80 г. № 28-13/6).

21.  Методические указания  по применению дезама для дезинфекции (утверждены Минздравом СССР 24.12.80 г. № 28-14/6).

22.  Методические указания по стерилизации  некоторых гемосорбентов (утверждены Минздравом СССР 28.12.83 г. № 28-6/5).

23.  Методические указания  по применению гибитана для дезинфекции (утверждены Минздрава СССР 26.08.81 г. № 28-6/4).

24.  Приказ Министерства  здравоохранения СССР от 17.01.79 г. № 60 “О мерах по дальнейшему укреплению и развитию дезинфекционного дела”.

25.  Методические рекомендации по химической очистке хирургических инструментов из нержавеющей стали (утверждены Минздравом СССР 14.03.83 г. № 28-6/6).

26.  Инструкция по дезинфекции и дезинсекции одежды, постельных принадлежностей, обуви и других объектов в паровоздушно-формалиновых, паровых и комбинированных дезинфекционных камерах и дезинсекции этих объектов в воздушно-дезинфекционных камерах (утверждена Минздравом СССР 29.08.77 г.).

 

НОРМАТИВНАЯ БАЗА О САНИТАРНО-ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКОМУ РЕЖИМУ

 В ПРОЦЕДУРНОМ КАБИНЕТЕ

Перечень основополагающих документов

1)      СанПиН № 5179-90.

2)      ОСТ № 42-21-2-85.

3)      Приказ МЗ СССР от 31.07.78 г. № 720.

4)      Методические рекомендации по организации ЦСО в ЛПУ (утверждены МЗ СССР от 21.12.89 г. № 15-6/8).

5)      Перечень разрешенных дезинфицирующих и стерилизующих средств и инструкции по их применению.

 

 МЕРЫ ПРЕДОСТОРОЖНОСТИ

ПРИ РАБОТЕ С  ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИМИ И МОЮЩИМИ СРЕДСТВАМИ

1.      Запасы препаратов хранят в местах, недоступных для общего пользования, в темной посуде, в темном сухом и прохладном месте. Все дезинфицирующие, моющие средства и их растворы должны иметь этикетки с указанием концентрации. В лечебно-профилактических и детских учреждениях дезинфицирующие средства и их расчеты хранят под замком в местах, недоступных для детей и лиц, не занимающихся дезинфекцией, отдельно от лечебных препаратов.

2.      Безопасность использования химических средств предстерилизационной очистки медицинских изделий для пациентов и персонала гарантируется соблюдением мер предосторожности.

3.      К работе допускаются лица не моложе 18 лет, прошедшие соответствующий инструктаж по производственным обязанностям, технике безопасности и мерам предосторожности при работе с химическими средствами. Ответственный за инструктаж – главный врач учреждения и специально назначенное приказом административное лицо.

4.      Медперсонал проходит предварительный и периодические (раз в год) медосмотры. Лица с повышенной чувствительностью к применяемым моющим средствам от работы с ними отстраняются.

5.      Необходимо строго соблюдать последовательность и точно выполнять все этапы дезинфекции, очистки, систематические проводить контроль за их качеством и полнотой щелочных компонентов моющих средств, обеспечивая максимальное удаление их остатков  с обрабатываемых объектов.

6.      Расфасовку, приготовление рабочих растворов формальдегида, перекиси водорода, дезоксона-1, хлорамина проводить в вытяжном шкафу или в крайнем случае в отдельном проветриваемом помещении.

7.      Всю работу с дезинфицирующими и моющими средствами проводят в резиновых перчатках, герметичных очках (ПО-2, ПО-3) и в четырехслойной марлевой маске или в противопылевых, или универсальных респираторах. По окончании работы руки моют и смазывают кремом.

 

Методические указания по предстерилизационной

очистке изделий мед. наз. МЗ СССР 8/1-82 г. № 28 6/13

 

ЛИЗОФОРМИН-3000

Меры предосторожности:

1.      Применение р-ра препарата должно проводиться в проветриваемых помещениях, имеющих естественное или принудительное проветривание.

2.      Дезинфекция помещений проводится в отсутствии больных.

3.      Емкости с препаратом при его хранении и использовании должны быть закрыты и открываться только по необходимости (погружение, ручная обработка, выемка изделий).

4.      Работа персонала с препаратом в обусловленных «Методическими указаниями» режимах может осуществляться без применения средств защиты органов дыхания, но с обязательной защитой кожи рук резиновыми перчатками.

5.      При работе с препаратом избегать его попадания в глаза и на незащищенную кожу.

6.      Не допускать к работе с препаратом лиц в повышенной чувствительностью к химическим веществам.

7.      Хранить препарат и его рабочие р-ры отдельно от лекарственных средств, в местах, недоступных детям.

 

ЛИЗОФОРМИН СПЕЦИАЛЬ

Меры предосторожности и первой помощи:

1.      Лизоформин специаль – мало опасное соединение. При приготовлении рабочих р-ров средства следует избегать попадания его на кожу и в глаза.

2.      Все работы со средством проводить в перчатках.

3.      При работе с препаратом соблюдать правила личной гигиены. После работы лицо и руки вымыть с мылом.

4.      Хранить средство отдельно от лекарственных препаратов, в местах, недоступных детям.

5.      При попадании ср5дства в глаза и на кожу – обильно промыть их водой.

6.      В случаях попадания ср5едства в желудок – промыть его большим количеством воды.

 

БЛАНИЗОЛ

Меры предосторожности и оказание первой помощи:

1.      При приготовлении рабочих р-ров следует избегать попадания препарата на кожу и в глаза.

2.      Все работы со средством необходимо проводить в резиновых перчатках.

Методические указания СКСЭН от 23.03.95 г. № 4398, г. Москва.

 

ДЕЗОФОРМ

Меры предосторожности:

1.      Приготовление рабочих растворов средства следует проводить в отдельном, хорошо проветриваемом помещении или в вытяжном шкафу. В том случае, когда таких условий нет, работу проводить с средствах  индивидуальной защиты: очки, респиратор типа РПГ-67, перчатки.

2.      Емкости со средством при его хранении должны быть закрыты.

3.      Не допускать к работе со средством лиц с хроническими заболеваниями органов дыхания и чувствительных к химическим веществам.

Первая помощь при отравлении:

1.      При несоблюдении мер предосторожности возможно острое отравление средством, которое выражается в резком раздражении органов дыхания (першение в горле и носу, кашель, затрудненное дыхание), слизистых оболочек глаз (жжение, резь, слезотечение, зуд), головокружение, тошноте.

Пострадавшего немедленно немедленно вывести на свежий воздух. Прополоскать горло, нос и рот. Показан прием теплого молока с  питьевой содой (1 ч.л. соды на стакан молока). При необходимости обратиться к врачу.

2.      При   попадании средства на кожу немедленнло промыть пораженный участок.

3.      При попадании средства в глаза немедленно промыть их струей воды и закапать 1-2 капли 30% р-ра сульфацила натрия и обратиться к врачу.

 

АМОЦИД

Меры предосторожности:

1.      Емкости с препаратом следует закрывать.

2.      Избегать попадания препарата в глаза и на кожу, защищать кожу рук резиновыми перчатками.

3.      После работы с препаратом помещения следует проветривать.

Первая помощь при отравлении:

1.      При нарушении мер предосторожности могут возникнуть признаки раздражающего действия на коже, слизистых оболочек глаз и органов дыхания.

2.      При раздражении органов дыхания, пострадавшего следует немедленно вывести на свежий воздух или в хорошо проветриваемое помещение. Рот и носоглотку прополоскать водой. Показан прием теплого молока с пищевой содой (1 ч.л. на стакан воды).

3.      При попадании препарата на кожу немедленно промыть пораженное место чистой водой.

4.      При попадании препарата в глаза немедленно промыть их струей воды в течение нескольких минут. Закапать р-р 30% сульфацила натрия.

 

АХД-2000-СПЕЦИАЛЬ

Меры предосторожности и первой помощи:

1.      Использовать только для наружного применения. Не наносить на раны и слизистые оболочки.

2.      При случайном попадании на слизистую оболочку глаз их следует обильно промыть проточной водой и закапать 30%  р-р сульфацила натрия (альбуцида).

3.      Легко воспламеняется! Не допускать контакта с открытым пламенем, включенным нагревательными приборами.

4.      Хранить отдельно от лекарств, в местах, недоступных детям, при температуре не выше 30ºС.

 

ХОСПИДЕРМИН

Эффективное средство для предоперационной обработки кожи, обеспечения швов.

Применение:

Для внешнего применения в неразбавленном виде! Поверхность кожи полностью смочить препаратом и дать высохнуть. При выполнении инъекций выдержка не менее 10 секунд, при хирургическом вмешательстве – не менее 2 минут до полного высыхания.

 

СЕПТАБИК и БРОМОСЕПТ 50

Не содержат хлора, фенолов, альдегидов, обладают моющими свойствами, не портят поверхности.

Активны в отношении – бактерии-0,05-02% (в т.ч. туберкулез – 1%), - грибы, дерматофиты-0,5%, - вирусы (в т.ч. гепатит В и ВИЧ) – 1%.

Рабочие растворы (водные) активны в течение 7 суток. 

Сфера применения:  - помещения, сантехоборудование, - предметы ухода за больными, - изделия медназначения (включая эндоскопы, стоматологический и хирургический инструмент), в т.ч. их предстерилизационная очистка.

Не токсичны, не вызывают аллергии, используются в присутствии людей, в т.ч. в детских учреждениях.

ОКТЕНИСЕПТ(концентрат, активные вещества: октенидиндигидрохлорид 0,1%, феноксиэтанол 2%, кокамидопропил бетаин, глицерин, глюконат натрия). Антисептик для обеззараживания слизистой и кожи. Обеззараживание ран, ожогов, послеоперационных швов, лечение и предупреждение воспалений слизистой в хирургической и акушерско-гинекологической практике, в травматологии, проктологии, отоларингологии, стоматологии и т.д. Подавляет бактерии (включая бактерии туберкулёза), вирусы (включая герпес, гепатит Б, ВИЧ-инфекцию), грибки, дрожжи, хламидии, микоплазму. Рабочие растворы: 100%-6%.

ГИБИТАН (концентрат, активные вещества: хлоргексидин глюконат 20%) предназначен для дезинфекции хирургических, стоматологических, гинекологических и других инструментов и изделий медицинского назначения из металла, стекла, пластмасс (включая эндоскопы и инструменты к ним), антисептической обработки рук медицинского персонала и обработки кожи операционного поля. Рабочие растворы: 0,1 – 0,25%, 2,5% р-р в 70° эталоне.

КАТАПОЛ . Антисептик широкого спектра действия. Проявляет бактерицидную активность  в отношении стафилококков, стрептококков, грамотрицательных бактерий (кишечной и синегнойной палочек, протея, клебсиеллы и др.), анаэробных бактерий, грибов и плесеней. Применяют  в качестве антисептика местного действия, при гнойных ранах и ожогах. Препарат накладывают (марлевые повязки или тампоны с катаполом) на рану ежедневно. Рабочие концентрации: 1% раствор.

ВАЗА-СОФТ. Жидкое антибактериальное моющее средство для мытья кожи.  Рекомендуется в случаях, когда необходимо частое мытьё рук – перед хирургической и гигиенической дезинфекцией рук. Не содержит щелочей, применим для чувствительной кожи. Применяется также для общего мытья тела – для ванн и душа. Приятный запах.

ПЛИВАСЕПТ 5% с ПАВ. Водные растворы предназначены для обеззараживания и дезинфекции поверхностей помещений, мебели, аппаратуры, салонов санитарной автомашины. 5% спиртовые растворы используются для хирургической и гигиенической дезинфекции кожи рук медицинского персонала, операционного и инъекционного поля, различных инструментов (кроме эндоскопов). Рабочие растворы (0,2-0,5%) стабильны в течении 8 часов. Автоклавированные водные растворы хранить не более 6 месяцев.

ПЛИВАСЕПТ тинктура. Применяется наружно в качестве профилактического средства в стационарной и амбулаторной практике, в машинах скорой помощи, в ветеренарии и быту для: антисептической обработки кожи операционного поля, рук медицинского персонала,  дезинфекции поверхностей (полы, стены, мебель) и изделий медицинского назначения.

АЭРОДЕЗИН 2000. Предназначено для дезинфекции поверхности оборудования и аппаратуры при инфекциях бактериальной и вирусной этиологии, трихофитиях и кандидозах. Применяется в неразбавленном виде.

ДЕЗЭФФЕКТ. Дезинфекция поверхностей, санитарно-технического оборудования, изделий медицинского назначения (включая жёсткие и гибкие эндоскопы, стоматологические инструменты) и предстерилизационная очистка изделий медицинского назначения. Рабочие растворы 0,11% - 3,8%. Эффективны в течение 14 дней, возможно многократное применение.

-         Универсальное средство для общей дезинфекции – ДЕОХЛОР ТАБЛЕТКИ;

-         Концентрат для предстерилизационной очистки и дезинфекции изделий медицинского назначения (рабочие растворы 1%-5%) – ДЮЛЬБАК ДТБ/Л;

-         Готовый раствор  для дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения, в т.ч. эндоскопов и т.п. – ДЮЛЬБАК РАСТВОРИМЫЙ;

-         Непревзойденный  стерилизант САЙДЕКС, отечественный стрилизант – БИАНОЛ;

-         Новое отечественное средство для общей дезинфекции на основе ЧАС-СЕПТУСТИН;

-         Средства для обработки рук и операционного поля – АСЕПТИНОЛС, АСЕПТИНОЛ СПРЕЙ, МОНОПРОНТО, ВЕЛТОСЕПТ;

-         Педикулицидный шампунь ЛАУРИ;

-         Новый зарегистрированный прибор для дезинфекции воздуха в помещениях ЛПУ – отечественный ОЗОНАТОР «ДЕКОНТ-2»;

-         Средства контроля рабочих растворов дезсредств – ДЕЗИКОНТЫ.

Инсектицидные и родентицидные препараты А/О «БАЙЕР» от насекомых (включая иксодовых клещей) и грызунов; БАЙТЕКС, БАЙГОН, ЗОЛЬФАК, РАКУМИН.

Средства для мытья кухонной и лабораторной посуды (в воде любой температуры) – ДЕКЦИТРОН и ДИАНОКС УНИВЕРСАЛЬНЫЙ.     

 

 

ОСНОВНЫЕ САНИТАРНО-ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИЕ

 ТРЕБОВАНИЯ

 К РАБОТЕ ПРОЦЕДУРНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ СЕСТРЫ

ПРИ ВЫПОЛНЕНИИ МАНИПУЛЯЦИЙ

 

Все манипуляции процедурная медсестра производит в перчатках.

 Стерильные укладки готовятся на одну рабочую смену (6 часов .

 Используются одноразовые изделия медицинского назначения.

 

 

Расчетные нормы времени на выполнение процедур

медсестры процедурного кабинета

 

Наименование процедуры	Расчетные формы времени (в мин.) при проведении процедур
	взрослым	детям
Внутримышечные и подкожные инъекции	3,6	4
Внутривенные вливания	9	10
Взятие крови из вены	9,8	10,8
Постановка капельницы (при применении разовых систем)	13,5	17,5
Аутогемотерапия	10,4	11,4
Омпрессы, перевязки	8,2	9
Банки	9,6	10,5
Горчичники	12,5	13,8
Клизмы	10	11
Дуоденальное зондирование,  взятие желудочного сока	25	27,5
Определение группы крови	3	4,3
Подготовка инструментария (в смену) при наличии ЦСО при отсутствии ЦСО	58,0 120,0	58,0 120,0

 

Использованная литература.

1.      «Справочник медицинской сестры по уходу» под редакцией академика РАМН  Н.Р. Палеева. Москва, 1993 г.

2.      С.А. Мухина, И.И. Тарновская «Атлас по манипуляционной технике сестринского ухода». Москва, 1995 г.

3.      Приказ МЗ СССР № 408 от 12.07.89 г. «О мерах по снижению заболеваемости вирусными гепатитами в стране».

4.      Приказ МЗ СССР № 916 от 4.08.83 г. «Об утверждении инструкции по санитарно-противоэпидемическому режиму и охране труда персонала инфекционных больниц (отделений)».

5.      Приказ МЗ  и  МП Российской Федерации № 297/112 от 30.10.95 г. «О мерах по стабилизации  и снижению заболеваемости дифтерией».

6.      Приказ № 249 от 19.08.97 г. «О номенклатуре специальностей  среднего медицинского и фармацевтического персонала».

7.      Администрация Приморского края «Методические рекомендации по подготовке документов к аттестации на квалификационную категорию средними медицинскими работниками».

8.      Приказ № 131 от 23.05.95 г. «Об утверждении Положения об аттестации средних медицинских и фармацевтических работников».

9.      Приказ № 186 от 05.06.98 г. «О повышении квалификации специалистов со средним медицинским и фармацевтическим образованием».

10.  Приказ МЗ Российской Федерации № 156 от 20.05.97 г. «О занятости медицинской и фармацевтической  деятельностью в Российской Федерации».

11.  «Сестринское дело» Самара, 1998 под ред. А.Ф. Краснова, 368с.

12.  Басихина Т.С., Коноплева Е.Л., Кулакова Т.С., Нагорная С.В., Побединская В.А., Ткаченко Е.Г., Филичкина И.И. "Учебно-методическое пособие по основам сестринского дела" том 1,Москва, 2000. - 231с. и том 2, Москва, ВУНМЦ, 2000 - 721с.